| Indhold |
Miljøprojekt nr. 718, 2002
Afgivelse af organisk stof fra polymere materialer - mikrobiel vækst
Indholdsfortegnelse
I 1997 vedtog Folketinget en tilskudsordning til at støtte bevarelsen af den
decentrale vandforsyningsstruktur. Herunder blev der afsat midler, som blev anvendt til
"Programmet til sikring og forbedring af drikkevandskvaliteten". Programmets
primære formål var at udbygge den eksisterende viden om faktorer, der påvirker
drikkevandets kvalitet, fra det bliver indvundet, behandlet på vandværket, og til det
bliver distribueret til forbrugerne.
I 1998 blev projektet "Undersøgelser af materialers evne til mikrobiologisk
vækst ved laboratorieforsøg" sendt i udbud. Projektet blev udført af IMT -
Institut for Miljøteknologi*, DTU i samarbejde
med VKI**. Hans-Jørgen Albrechtsen, IMT, var
projektleder med Erik Arvin og Charlotte Bettina Corfitzen, IMT, samt Claus Jørgensen og
Rasmus Boe-Hansen, VKI, som øvrige deltagere.
Styregruppen bestod af Linda Bagge (formand) og Janne Forslund, Miljøstyrelsen,
Jørgen Beck fra Sjælsø Vandværk, Søren Lind fra Københavns Vand og Anders
Vestergaard fra Uponor, som repræsentant for plastproducenterne.
IMT og Miljøstyrelsen ønsker at takke de involverede plastproducenter for deres
hjælp med bidrag af materialer, Lyngby vandværk for et godt samarbejde og Helle Holst,
IMM - Institut for matematisk modellering, DTU, for hjælp med spørgsmål angående den
statistiske behandling af data.
* |
Fra 2001: E&R, DTU - Miljø & Ressourcer, DTU.
Sammenslutning af IMT - Institut for Miljøteknologi, IGG - Institut for Geologi og
Geoteknik og ISVA - Institut for Strømningsmekanik og Vandresurser.
|
** |
Fra 2000: DHI - Institut for Vand og Miljø. Sammenslutning
af VKI og DHI - Dansk Hydraulisk Institut. |
Dansk drikkevand er generelt af meget høj kvalitet og indeholder kun relativt få
mikroorganismer, når det forlader vandværket. Indholdet af mikroorganismer kan dog stige
undervejs til forbrugeren; hvilket betegnes som mikrobiologisk eftervækst. Denne
eftervækst i distributionssystemet er overvejende styret af faktorer som opholdstid,
temperatur og mængde af tilgængeligt substrat. Da størstedelen af mikroorganismerne i
drikkevandssystemer er heterotrofe bakterier, er mængden af organisk kulstof således
oftest den begrænsende faktor for bakterievæksten. Bakterier kan dog umiddelbart kun
udnytte en mindre faktion af det organiske stof til vækst, hvilket betegnes Assimilerbart
Organisk Kulstof (AOC). Dels er der AOC i vandet, når det forlader vandværket, dels kan
der tilføres AOC under distribution ved brud eller ved afgivelse fra anvendte materialer,
fx polymerer. Polymere materialer (plasttyper) har i stigende grad vundet indpas i
vandforsyningen, både i distributionsnettet og i husinstallationer og i fremtiden
forventes 75% af ledningsnettet at udgøres af PE og 19% af PVC.
Formålet med dette projekt har været at undersøge, om der afgives mikrobielt
tilgængeligt organisk kulstof fra polymere materialer, og om denne afgivelse er
væsentlig i forhold til det generelle niveau i dansk drikkevand. Dette er blevet
undersøgt ved at bestemme AOC-afgivelsen til vand i kontakt med materialet.
En væsentlig del af projektet fokuserede på at udvikle en egnet metode, med
hovedvægten på en strategi, hvor afgivelsen blev målt over to trin:
- Ekstraktion uden bakterier tilstede
- Efterfølgende AOC-bestemmelse på ekstraktet
Materialerne blev ekstraheret ved nedsænkning i testvand i testflasker. I modsætning
til andre undersøgelser, hvor afgivelsen fra materialer er blevet undersøgt ved
opfyldning af rør, gav den her benyttede tilgang mulighed for at undersøge andre
komponenter end rør, fx fittings. Ved at ekstrahere materialet uden at have bakterierne
tilstede, kunne ekstraktionsforholdene vælges vilkårligt uden hensyn til bakterierne
vækstkrav: Der kunne benyttes høj/lav temperatur, kloreret testvand, høj/lav pH osv.
Efter endt ekstraktion blev materialet fjernet og AOC-indholdet i ekstraktet blev bestemt
med en let modificeret AOC-bestemmelse, idet de sterile ekstrakter kun blev podet med
bakteriestammen P17. Under inkuberingen ved 15° C blev
kimtallet for P17 bestemt på R2A-agar, og det maksimale kimtal blev omsat til
en AOC-værdi ved at benytte en udbyttekonstant for bakteriernes vækst på acetat.
Inden ekstraktionen blev materialestykkerne renset ved 24 timers henstand i postevand
med 1 times skylning i postevand. Herefter blev bakterier på materialeoverfladerne
inaktiveret ved pasteurisering, inden materialet blev overført til pasteuriseret
testvand, hvor det blev ekstraheret.
Under optimeringen af metoden blev en række parametre undersøgt:
 | Ekstraktionstemperatur |
 | Ekstraktionstid |
 | Forhold imellem materialernes overfladeareal og vandvolumen (S/V forhold) |
 | Omrystning under ekstraktionen |
Forlænget ekstraktionstid forøgede afgivelsen. Ligeledes øgede omrystning under
ekstraktionen afgivelsen fra materialet med ca. 50%. En øget materialemængde, og dermed
et øget overfladeareal af materialet, i samme volumen (større S/V forhold) gav stigende
AOC-værdi i vandfasen indtil et vist S/V forhold, over hvilket AOC-afgivelsen ikke blev
forøget. Når afgivelsen blev omregnet til en flux-værdi (mg
acetat-C/døgn/cm2) var der omvendt proportionalitet mellem S/V forhold og
fluxen.
Det viste sig vanskeligt at inaktivere den naturlige population på materialernes
overflader. Forskellige pasteuriseringsforhold og kloring blev undersøgt, men det viste
sig nødvendigt og hensigtsmæssigt i hvert tilfælde efter endt ekstraktion at
kontrollere, om ekstraktet var kontamineret med uønskede bakterier. Måling af adenosine
triphosphate (ATP) viste sig i kraft af hurtige analyse og høj følsomhed at være en
velegnet metode.
Desuden kunne ATP-måling alternativt benyttes til at måle vækstkurver for P17, idet
der var god overensstemmelse imellem vækstkurver for P17 målt ved kimtal og ATP.
På baggrund af de indledende undersøgelser blev testmaterialerne ekstraheret i 15
døgn ved 20° C under omrystning. Der blev undersøgt fem
polymere materialer: to PEM materialer (sort og blåt) og tre PVC materialer (med
henholdsvis bly, zink/calcium og organiske stabilisatorer), hvilket resulterede i
flux-værdier på 3,5-5,5´ 10-3 mg
acetat-C/døgn/cm2.
De opnåede resultater og betydningen af S/V-forhold kan teoretisk relateres til, at
der i hovedledninger kan afgives <1 m g acetat-C/L/døgn, i
forsyningsledninger 1-3 mg acetat-C/L/døgn og i
stikledninger/husinstallationer 3 mg acetat-C/L/døgn. En
undersøgelse foretaget på 9 danske vandværker (Jørgensen et al., 2002) viste, at
AOC-indholdet i vandet fra vandværket var grupperet omkring henholdsvis 4-6 mg acetat-C/L og 20-39 mg acetat-C/L.
Afgivelser fra de polymere materialer vil have mindre betydning i vand fra den sidste
gruppe, men ved længere opholdstider (fx i forsyningsledninger til landlokaliteter eller
stillestående vand i en husinstallation over en weekend) vil afgivelserne kunne mere end
fordoble vandets AOC-indhold i vand fra den første gruppe.
Danish water supply is based on ground water treated without disinfectants. The treated
water has in general low bacterial numbers when leaving the water works, but this does not
necessarily ensure low bacterial numbers at the consumers tap. Throughout the distribution
network the concentration of bacteria in the water is likely to increase, a phenomenon
called bacterial regrowth. This regrowth is mainly controlled by retention time,
temperature and level of biodegradable substrate. In drinking water the main part of the
bacteria is heterotrophic and thus the concentration of organic carbon often will be the
limiting growth factor. The bacteria can only assimilate and grow on a minor fraction of
the total organic carbon, which is called Assimiable Organic Carbon (AOC). Some AOC will
be present in the water when leaving the water works, but the concentration may increase
in connection with leaks in the pipe system or by release from the materials of the
distribution system. The use of polymeric materials (plastic) in distribution systems is
still increasing, and it is expected that 75% of the pipe system will consist of PE and
19% of PVC in the near future.
The purpose of this project was to evaluate the significance of biodegradable substrate
migrating from polymeric materials compared to levels of AOC in drinking water in general.
This was evaluated by measuring the AOC migrating into water in contact with the
materials.
A major part of the project focused on developing a suitable method with the main
efforts on a two-step procedure to determinate the migration:
- Extraction without bacteria
- Subsequent AOC-measurement of the extract
The materials were extracted by submerging pieces of the material into water. In this
way the method could be used to test other components besides pipes, e.g. fittings. By
extracting the materials without bacteria, the extraction condition could be set without
regarding the growth conditions for the bacteria: E.g. high/low temperature, chlorinated
water, high/low pH. After the extraction the material pieces were removed and the AOC
concentration in the extract was measured. In this project a slightly modified AOC
measurement was used: The sterile extracts were only inoculated with P17 and incubated at
15° C. During incubation the numbers of P17 were determined by
plate counts using R2A-agar. The maximum bacterial number was converted into an
AOC value by a yield constant for growth of the bacteria on acetate.
Before extraction the material pieces were rinsed by 24 hours retention in potable
water followed by rinsing in running potable water for 1 hour. The material pieces were
afterwards pasteurised in potable water to inactivate the bacteria on the material
surfaces. The material pieces were then transferred into pasteurised test water for
extraction.
While optimising the method the following parameters were evaluated:
 | Temperature for the extraction |
 | Extraction time |
 | The ratio between material surface and water volume (S/V ratio) |
 | Shaking during extraction |
Extended extraction time resulted in an increased migration. Shaking during extraction
also increased the migration with approximate 50%. An increased amount of material giving
an increased surface area of the material in the same volume of test water (increased S/V
ratio) resulted in an increased AOC value, until a certain S/V ratio above which no
further substantial increase in migration was observed. Expressing the migration as a flux
(mg acetat-C/day/cm2), the flux was inversed
proportional to the S/V ratio.
It was sometimes a problem to inactivate all the bacteria present on the materials
surfaces. Different types of pasteurisation and chlorination were tested, but it became
necessary and appropriate in each case after the extraction to test if bacteria have
contaminated the extract. Measurements of adenosine triphosphate (ATP) proved to be an
effective method due to its rapid analysis and high sensitivity.
Furthermore, ATP measurement could be used to measure growth curves for P17 because of
the good accordance between growth curves measured by CFU and ATP.
The initial investigations lead to a procedure where materials were extracted for 15
days at 20° C with shaking. Five polymeric materials were
tested: Two PE materials (black and blue) and three PCV materials (with respectively lead,
zinc/calcium or organic stabilizers), which resulted in flux values in the range 3.5-5.5´ 10-3 mg acetat-C/day/cm2.
The obtained results and the observed effect of S/V ratios can theoretically be related
to a release from the materials of <1 mg acetate-C/L/day in
main pipes, 1-3 mg acetate-C/L/day in supply pipes and 3 mg acetate-C/L/day in service pipes/house installations. A survey
involving 9 Danish water works (Jørgensen et al., 2002) showed, that the general AOC
content in treated water was grouped around values of 4-6 mg
acetate-C/L and 20-39 mg acetate-C/L. Migrations from polymer
materials will be of less importance in water types from the last group. In water types
from the first group, prolonged retentions times (e.g. supply pipes to rural districts or
stagnant water in a house installation over a weekend) may more than double the waters AOC
concentrations due to release from materials.
Langt størstedelen af den danske vandforsyning er baseret på grundvand af høj
kvalitet, der kun gennemgår en begrænset behandling uden desinfektion, inden det ledes
ud i distributionsnettet. Der er relativt få mikroorganismer i det færdigtbehandlede
vand, men indholdet af mikroorganismer vil kunne stige undervejs til forbrugeren. Denne
stigning i koncentrationen af bakterier fra vandværk til forbruger kaldes mikrobiel
eftervækst.
Mikrobiel eftervækst er uønsket, da en øget biomasse i distributionsnettet kan øge
risikoen for overlevelse af patogener og samtidig forringe vandkvaliteten med hensyn til
lugt, smag og farve. Da størstedelen af biomassen vil sidde på de indvendige flader som
en biofilm, vil der desuden være risiko for nedbrydning af installationsmaterialerne.
Mængden af tilgængeligt substrat, temperaturen og opholdstiden i distributionsnettet
har indflydelse på antallet af mikroorganismer. Temperaturen og opholdstiden har i de
seneste år været stigende som følge af det faldende vandforbrug (Figur 1), hvilket har
øget risikoen for eftervækst. Langt størstedelen af mikroorganismerne i drikkevand er
bakterier, som overvejende vil være heterotrofe. Heterotrofe bakterier kan generelt siges
at behøve C, N og P i forholdet 100:10:1 /van der Kooij et al., 1982/, og indholdet af
organisk kulstof er således oftest den begrænsede faktor for bakterievækst i
drikkevand. Det er dog kun en mindre del af den totale mængde organiske kulstof (Total
Organic Carbon, TOC) bakterierne kan optage og udnytte (assimilere). Den fraktion, som
bakterierne kan assimilere (Assimilable Organic Carbon, AOC), vil normalt udgøre 0,1-10%
af TOC /Hem et al., 1997/.
Figur 1:
Sammenhæng imellem opholdstid og temperatur i ledningsnettet i Københavns
kommune /DVF, 1998/.
Første trin i en kontrol af eftervækst er at sikre, at det færdigtbehandlede vand
har et lavt AOC-indhold, når det forlader vandværket. Van der Kooij et al. /1995/
anfører som tommelfingerregel, at vand med et AOC-indhold på under 10 mg C /L kan karakteriseres som biologisk stabilt, hvilket vil sige,
at bakterietallet ikke øges i distributionsnettet. AOC kan blive tilført
distributionsnettet ved brud på ledningsnettet og ved afgivelse fra anvendte materialer,
hvorved der vil kunne forekomme eftervækst, selvom vandet fra vandværket er biologisk
stabilt.
Tabel 1:
Materialefordeling i ledningsnettet. Tal er baseret på
spørgeskemaundersøgelse på 44 af de største vandforsyninger repræsenterende ca. 45%
af den samlede udpumpede vandmængde /DVF, 1995/. - : forventes ikke anvendt.
|
Materialefordeling
i eksisterende ledningsnet 1994 |
Forventet
fremtidig materialeanvendelse |
Ledningsmateriale |
% |
Km |
% |
PVC
PE
Gråt støbejern
Duktilt støbejern
Stål
Bonna (armeret cement)
Eternit (asbestcement)
Andet |
41
7
35,5
3
2
3
8
0,5 |
6.003
1.025
5.198
439
293
439
1.172
73 |
19
75
1
2
0,5
-
0,5
2 |
Ialt |
100 |
14.642 |
100 |
I Danmark udgøres ledningsnettet primært af rør af støbejern eller polymere
materialer. Husinstallationer, fittings og andre smådele har hidtil været domineret af
galvaniseret jern, kobber og messing, men vil i nyere installationer primært være af
polymere materialer. I Tabel 1 er angivet den eksisterende og den fremtidige, forventede
materialefordeling baseret på tal fra Danske Vandværkers Forening. Tabellen stemmer godt
overens med 1993-tal fra Odense vandforsyning (PVC: 50,9%; PE: 3,5%; gråt støbejern:
24,1% /Lorenzen, 1993/) mens gråt støbejern udgør en større andel af Københavns vands
eksisterende ledningsnet (PVC: ikke angivet; PE: 5,3%; gråt støbejern: 66% /Københavns
Vand, 1998/). Gråt støbejern og eternit vil med tiden blive udskiftet med andre
materialer, da der er stor risiko for brud, og erfaringsmæssigt giver de to materialer
anledning til problemer med belægninger, der reducere trykket og giver snavset vand
/Lorenzen, 1993/. Polymere materialer udgør således i stadig stigende grad en betydelig
andel af det danske vandforsyningssystem.
Polymere materialer består sjældent af rene polymere, men indeholder en række
additiver, som skal forbedre materialernes fysiske egenskaber eller lette
fremstillingsprocessen. Additiver kan bla. være: fyldstoffer (f.eks. CaCO3 i
PVC), stabilisatorer (herunder antioxidanter, antiozonanter og UV absorbers), farvestoffer
og smøremidler /Coulson, 1972 og Mascia, 1974/. Hver enkelt gruppe af additiver udgøres
af et væld af forskellige organiske stoffer såvel som et mere begrænset antal
uorganiske stoffer. Hvilke additiver, der tilsættes de enkelte produkter, varierer fra
producent til producent, hvorfor en given materialetype fra forskellige producenter har
forskellig sammensætning.
Når det polymere materiale er monteret i ledningsnettet eller i husinstallationer, kan
monomerer, der ikke er blevet polymeriseret, og additiverne eller deres
nedbrydningsprodukter blive afgivet (migrere) fra materialet til vandfasen. En del af
disse stoffer vil kunne tjene som AOC-kilde for bakterierne. Den bakterievækst, som
afgivelsen fra materialet medfører, angives som materialets eftervækstpotentiale.
Formålet med projektet var at undersøge, om afgivelsen af mikrobielt tilgængeligt
organisk stof fra polymere materialer har betydning i forhold til generelle niveauer i
dansk drikkevand. Det skulle undersøges, om en række polymere materialer kunne
understøtte mikrobiologisk vækst ved bestemmelse af AOC afgivet til vand i kontakt med
materialet. Dette nødvendiggjorde udviklingen af en metode til at bestemme polymere
materialers eftervækstpotentiale.
Ved projektets start var der lagt op til, at hovedvægten af arbejdet skulle
koncentreres om selve afprøvningen af en lang række materialer, der udover
rørmaterialer skulle omfatte fittings og andre smådele anvendt i vandforsyningen.
Desuden skulle en række materialer testes med to forskellige vandtyper repræsentativt
for dansk vandforsyning. For materialer, der udviste gode vækstmuligheder, skulle det
endvidere undersøges, om legionella kunne overleve/vokse på stoffer afgivet fra
materialerne. Under projektets afvikling blev det imidlertid klart, at der skulle anvendes
større ressourcer på udviklingen af metoden, hvorfor det blev valgt at prioritere dette
arbejde, og efterfølgende kun teste et mindre antal materialer. Materialer blev således
kun testet med én vandtype, og der blev ikke foretaget test med legionella.
I forbindelse med transport af drikkevand foreligger der en CEN standard til
bestemmelse af plastrørs migrationsværdier /DS/EN 852-1/. Ud fra denne standard kan
migrationsværdier for lugt, smag, farve, TOC og specifikke stoffer, såsom phenol,
bestemmes. Der findes ikke nogen international standard til bestemmelse af materialernes
eftervækstpotentiale, men flere lande har nationale standarder. Dette betyder, at
plastproducenterne skal bekoste afprøvninger nationalt i de lande, hvor de ønsker deres
produkter godkendt. Dette er en stor udgift, som vil kunne mindskes betydeligt ved
vedtagelse af en international/europæisk gældende standard. Vedtagelse af en sådan
standard vil endvidere forenkle arbejdsgangen for brugerne af materialerne, da der ikke
forud for brug skal undersøges, om det pågældende materiale er godkendt i det aktuelle
land.
På nuværende tidspunkt er der et udviklingsarbejde i gang i CEN for at fastlægge en
fælles europæisk standard til at bestemme eftervækstpotentiale for polymere materialer
anvendt i vandforsyningssammenhæng. Fire metoder danner grundlag for dette arbejde:
 | BS 6920, der fungerer som engelsk standard. |
 | DVGW W270, der fungerer som tysk standard. |
 | KIWA metoden, der er udviklet på KIWA instituttet i Holland. |
 | ÖKI metoden, der er udviklet på ÖKI instituttet i Østrig. |
Tabel 2:
Opsummering af fire eksisterende metoder til bestemmelse af
eftervækstpotentiale for polymere materialer anvendt i drikkevandsforsyningen / ÖKI,
2000/.
Parametre |
BS 6920 Sec.2.4 |
DVGW W270 |
KIWA metode |
ÖKI metode |
Testperiode |
7 uger |
26 uger |
16 uger |
16 uger |
Teststrategi |
To vandskift per uge |
To tretten ugers testperioder |
Batch |
Et vandskift per uge |
Vandskifte |
Semi-batch |
Kontinuert |
Batch |
Semi-batch |
Inokulum |
Flodvand |
Drikkevand |
Flodvand |
Drikkevand |
Testvand |
Afkloret drikkevand |
Ukloret drikkevand |
Ukloret drikkevand |
Afkloret drikkevand |
Inkuberings-
temperatur |
30° C |
Rum-
temperatur |
25° C |
23° C |
Overfladeareal af test-
materiale |
150 cm2 |
800 cm2 |
12´ 8 cm2 |
1257 cm2 (1 m rør med Dindre=4
cm) |
Testvand volumen |
1000 mL (S/V=0,15 cm-1) |
Kontinuert flow |
600 mL (S/V=0,16 cm-1) |
1257 mL (S/V=1 cm-1) |
Mikrobiel parameter for testvand |
Opløst oxygen |
Ingen |
ATP |
ATP og HPC |
Mikrobiel parameter for testmateriale |
Ingen |
Biomasse volumen |
ATP |
ATP |
Kontrol materialer |
Paraffin voks, glas og rustfrit stål |
Paraffin voks, glas og rustfrit stål |
PTFE, glas, PCVC-P og rustfrit stål |
Glas og PVC-P |
I Tabel 2 er de fire metoder opsummeret.
BS 6920 /prEN/
Testmaterialet inkuberes i glasbeholdere med testvand inokuleret med flodvand.
Materialet inkuberes i 7 uger med 2 ugentlige vandskift. Inden vandskift i uge 5, 6 og 7
måles opløst oxygen i vandfasen. Gennemsnittet af forskellen imellem prøver og
kontroller på de tre måletidspunkter: "Mean dissolved oxygen differens"
anvendes som mål for materialets eftervækstpotentiale.
DVGW W270 /prEN/
Plader af testmaterialet anbringes i et kar, hvor testvandet tilføres i et kontinuert
flow. Efter 13 ugers henstand optages pladerne, og den dannede biomasse skrabes af.
Herefter sættes pladerne tilbage i karret, og proceduren gentages. Volumen af den dannede
biomasse i de to inkuberingsperioder anvendes som mål for materialets
eftervækstpotentiale.
KIWA metoden /prEN/
Stykker af testmateriale inkuberes 112 døgn i Erlenmeyerkolber i testvand inokuleret
med flodvand. Dag 56, 84 og 112 bestemmes biomassekoncentrationer på testmaterialet og i
vandfasen ved måling af ATP. Gennemsnitlige ATP-koncentrationer for de tre målinger
anvendes som mål for materialets eftervækstpotentiale.
ÖKI metoden /Öki, 2000/
Rørstykker af testmaterialet fyldes med testvand. En gang hver uge skiftes vandet.
Inden vandskift måles biomassekoncentrationen i vandfasen ved kimtalsbestemmelse og
måling af ATP. Efter 3 måneders inkubering bestemmes biomassen på testmaterialets
inderside ved måling af ATP. De løbende målinger på testvandet og den dannede biofilm
anvendes som mål for eftervækstpotentialet.
I det indledende arbejde under CEN blev BS 6920, DVGW W270 og KIWA metoden afprøvet
på en række materialer for at sammenholde pass/fail for de tre forskellige metoder
(Tabel 3). Der blev ikke fundet fuldkommen overensstemmelse imellem metoderne, end ikke
imellem forskellige laboratorier, der udførte BS6920-metoden.
Tabel 3:
Resultat af intern afprøvning i CEN sammenhæng af tre metoder til
bestemmelse af polymere materialers eftervækstpotentiale. Resultatet er opgivet ud fra de
enkelte tests pass/fail kriterier. NT: ikke målt. /CEN, 1993/
|
BS6920 |
KIWA metoden |
DVGW W270 |
Materiale |
Lab. A |
Lab. B |
Lab. C |
Lab. D |
|
|
Gummi |
Pass |
Pass |
Pass |
Fail |
Fail |
Fail |
Orange p-PVC |
Fail |
Pass |
Fail |
Fail |
Fail |
Fail |
Sort PE |
Pass |
Pass |
Pass |
Pass |
Pass |
Pass |
Voks |
Fail |
Fail |
Fail |
Fail |
Fail |
Fail |
EP Washers |
Pass |
Pass |
Fail |
Pass |
Fail |
NT |
Ingen af de fire metoder er designet med dansk vandforsyning for øje. Dansk vandforsyning
adskiller sig fra det øvrige Europa ved, at mere end 99% af indvindingen er baseret på
grundvand, der generelt ikke desinficeres. I udlandet er desinfektion ved brug af
klorforbindelser langt mere udbredt og indholdet af N, P samt organisk stof (herunder
også AOC) vil generelt være større end i dansk drikkevand. Det er derfor ikke
repræsentativt for dansk drikkevand, at der i BS6920 og KIWA metoden inokuleres med
flodvand, ligesom at forskellen i niveauet af næringssalte kan have indflydelse. Desuden
er alle fire metoder meget tidskrævende i deres udførelse (7-26 uger), og kræver i
større eller mindre grad specielt udstyr eller opstillinger.
I dette projekt er der anvendt en metode baseret på et andet princip end de ovenfor
nævnte, idet hovedformålet har været at undersøge om afgivelsen af mikrobielt
tilgængeligt substrat fra de polymere materialer er betydende i forhold til vandets
indhold af substrat. Organisk mikrobielt tilgængeligt substrat i drikkevand bestemmes
ofte som Assimilable Organic Carbon (AOC), og kvantificeringen af substrat afgivet fra
materialer er derfor baseret på samme måleprincip.
Projektet tog udgangspunkt i, at fastlægge en metode til bestemmelse af polymere
materialers eftervækstpotentiale udtrykt som stigningen i AOC i en vandfase i kontakt med
materialet.
Nedenfor er principperne for en ordinær AOC-bestemmelse gennemgået tillige med de
parametre, der blev overvejet og undersøgt i forbindelse med at fastlægge en metode til
at bestemme materialernes eftervækstpotentiale. Kapitlet afsluttes med en gennemgang af
den endeligt benyttede metode. De undersøgelser, der blev udført for at afklare de
forskellige parameters betydning, er gennemgået i kapitel 4 - 7. I Bilag A er angivet en
oversigt over de materialer, der blev anvendt i projektets eksperimentelle arbejde.
Metoden til at bestemme Assimilable Organic Carbon (AOC) blev udviklet i starten af
80'erne af hollænderen D. van der Kooij til at bestemme AOC i drikkevand, hvor
koncentrationerne måles i mg/L. Metoden har været anvendt i
vid udstrækning som uofficiel standard, og van der Kooij udgav i 1995 en detaljeret
gennemgang af metoden /van der Kooij et al., 1995/. En variation af metoden er
optaget i /Standard Methods, 1998/, men denne udgave skønnes ikke at være
hensigtsmæssig i projektets sammenhæng, da den foreslåede arbejdsgang kan introducere
større usikkerhed ved den enkelte bestemmelse, idet der anvendes serier af mindre
testbeholdere i stedet for en enkelt testbeholder.
Figur 2:
Principskitse af AOC-metodens udførelse, jævnfør nedenstående tekst.
Metoden er et bio-assay, hvor en vandprøves AOC-værdi bestemmes ud fra det antal
bakterier, der kan vokse op på de organiske kulstofforbindelser i prøven. Vandprøven
tappes i en kulstoffri testflaske, og prøvens naturlige bakteriepopulation inaktiveres
ved pasteurisering. Prøven podes efterfølgende med to bakteriestammer, Pseudonomas
fluorescens, stamme P17 og Aquaspirillum, stamme NOX (tidligere
kaldt Spirilum, NOX), der tilsammen kan omsætte langt størstedelen af de organiske
kulstofforbindelser i drikkevand /van der Kooij et al., 1995/. Prøven inkuberes i mørke
ved 15° C, og bakterieantallet følges over tid ved at
bestemme kimtallet på R2A, et lavsubstrat medie specielt egnet til
bestemmelser i næringsfattige miljøer (sammensætningen af R2A-agar er
angivet i Bilag B). Vækstkurvernes maksimale bakterieantal omsættes til prøvens
AOC-værdi udtrykt i mg acetat-C ækvivalenter/L ved brug af
udbyttekonstanter for P17 og NOX på acetat. Udbyttekonstanterne for
acetat-koncentrationer på 5-250 mg acetat-C/L er 4,1*106
CFU/m g acetat-C for P17 og 1,2*107 CFU/mg acetat-C for NOX /van der Kooij et al., 1995/.
I Bilag C er AOC-metoden gennemgået detaljeret i den udgave, der dannede baggrund for
projektarbejdet. I projektet blev der anvendt stammer af P17 og NOX tilsendt fra van der
Kooij, KIWA.
Kontakten mellem materiale og vandfase kunne principielt etableres på to måder.
Vandet kunne henstå i givne rørlængder, og derefter blive overføres til testflaskerne
til AOC-bestemmelse, hvilket ville modsvare virkelige forhold. Alternativt kunne
rørstykker henstå i testvand i testflaskerne, hvori AOC-bestemmelsen ville blive
udført. Denne fremgangsmåde blev benyttet, da det derved også ville være muligt at
anvende testmetoden til at undersøge andre vandforsyningselementer end rør, såsom
fittings. Dette begrænser dog samtidig metoden til kun at kunne omfatte rør af samme
materiale på inder- og ydreside.
Andre væsentlige testforhold var:
 | Hvilket vand skulle anvendes som testvand. |
 | Hvilket forhold imellem materialeoverflade og vandvolumen (S/V-forhold) skulle
materialerne undersøges ved. |
 | Hvordan skulle materialestykkerne forbehandles (renses) før test. |
 | Hvilket materiale kunne anvendes som ballastmateriale. |
 | Ved hvilken temperatur skulle materialerne testes. |
 | Skulle ekstraktionen af materialet udføres med bakterier og materiale til stede i
testflaskerne samtidig, eller skulle AOC-værdien bestemmes på et vandigt ekstrakt af
materialet. |
 | Hvor lang ekstraktionsperiode skulle der anvendes - og skulle ekstraktionen foregå med
omrystning. |
Da de polymere materialer skulle undersøges ved forhold gældende for dansk
vandforsyning, skulle testvandet have samme egenskaber som dansk drikkevand. Det enkleste
ville således være at anvende frisk produceret drikkevand med et lavt AOC-indhold.
Tabel 4:
Parametre for vand fra Lyngby Vandværk. /Lyngby-Tårbæk Kommune, 2000/.
|
pH |
Lednings-
evne |
KMnO4 |
Ca++ |
Mg++ |
Hårdhed |
Na+ |
K+ |
Enhed
Værdi |
7,65 |
mS/m
82,0 |
mg/L
3,0 |
mg/L
119 |
mg/L
13 |
°dH
19,6 |
mg/L
23 |
mg/L
3,8 |
|
CO2 |
Indamp-
ningsrest |
NH4+ |
Fe |
Mn |
HCO3- |
Cl- |
SO4-- |
Enhed
Værdi |
mg/L
<2 |
mg/L
470 |
mg/L
<0,05 |
mg/L
<0,01 |
mg/L
<0,005 |
mg/L
320 |
mg/L
64 |
mg/L
49 |
|
P |
Farvetal |
NO3- |
NO2- |
F- |
O2 |
Ni |
NVOC |
Enhed
Værdi |
mg/L
<0,02 |
mg/L
4 |
mg/L
2,1 |
mg/L
<0,01 |
mg/L
0,32 |
mg/L
7,6 |
m g/L
<3 |
mg/L
1,70 |
Der blev i projektet anvendt vand fra Lyngby Vandværk som testvand, idet IMT har en del
måle-erfaringer med dette vand. Selvom Lyngby Vandværk pumper fra flere forskellige
boringer, har det færdigbehandlede vand generelt lave AOC-værdier i størrelsesordnen
2-10 mg acetat-C/L, hvilket ville sikre lave blindværdier
under udførelse af test (parametre for vand fra Lyngby Vandværk er angivet i Tabel 4).
Der blev udført en enkelt undersøgelse med tilsætning af phosphor til testvandet, men
det blev ikke skønnet nødvendig at tilsætte næringssalte til testvandet.
Materialet, der skulle undersøges, blev udskåret i passende stykker (teststykker),
som blev tilsat testflaskerne. For at opnå en størrelse på teststykkerne, der dels var
til at arbejde med, og dels ikke ville kræve for store mængder materiale, blev der
indledningsvis valgt et S/V-forhold på 0,5 cm-1. Dette svarer til
S/V-forholdet i et fyldt rør med en indre rørdiameter på 8 cm. Med et vandvolumen på
200 mL blev der anvendt et totalt overfladeareal (inder- og yderside samt skæreflader) af
testmaterialet på 100 cm2. Under det eksperimentelle arbejde blev et bredt
spektrum af S/V-forhold afprøvet, hvor fra det blev besluttet af fastholde S/V-forholdet
på 0,5 cm-1.
3.2.3 Forbehandling af
testmateriale
Proceduren til for-vaskning af teststykkerne tog udgangspunkt i migrationsstandarden
/DS/EN 852-1, 1997/ med den modifikation, at teststykker blev for-vasket i flasker, mens
der i standarden for-vaskes ved opfyldning af rørlængder. Teststykkerne henstod således
et døgn i postevand og blev efterfølgende skyllet i postevand 1 time.
For at kunne udføre AOC-bestemmelsen med renkulturer måtte den naturlige population
på teststykkerne inaktiveres inden testen. Efter skylningen blev teststykkerne derfor
desinficeret ved pasteurisering i postevand ved et S/V-forhold svarende til
testsituationen (udføres i samme flasker som skylningen med låget skruet helt til).
Efter afkøling blev teststykkerne taget op, overhældt med pasteuriseret testvand for at
skylle vand fra pasteuriseringen af, og derefter overført til testflaskerne med
pasteuriseret testvand.
Under det eksperimentelle arbejde blev der til sammenligning afprøvet kloring som
desinfektionsmetode. Ud fra de opnåede resultater og af praktiske hensyn blev
pasteurisering fastholdt som desinfektionsmetode.
Teststykker af materialer med mindre massefylde end vand blev påsat en ballast for at
holde teststykkerne under vandoverfladen. I de indledende undersøgelser blev det forsøgt
at anvende glaskugler som ballastmateriale, men disse blev senere erstattet af net af
rustfrit stål, som blev skåret til i passende stykker. Ballastmaterialet blev påsat
hver enkelt teststykke inden forbehandlingen af teststykkerne.
Indledningsvis blev materialerne ekstraheret ved 10° C
svarende til en gennemsnitlige temperatur i ledningsnettet. Undervejs i udviklingsarbejdet
blev testtemperaturen hævet til 20± 2°
C, dels for at modsvare andre migrationstest udført af Miljøstyrelsen, og dels for at
repræsentere et "worst case" scenario svarende til temperaturen, der i visse
situationer kan opnås i dele af distributionsnettet.
Ekstraktionstiden blev indledningsvis sat til 20 døgn, som en absolut maksimal
opholdstid i ledningsnettet. I det eksperimentelle arbejde blev der afprøvet flere
forskellige ekstraktionstider, hvilket førte til en ekstraktionstid på 15 døgn.
Ekstraktionen af materialer kunne udføres med eller uden tilstedeværelsen af aktive
bakterier. I de indledende undersøgelser blev begge ekstraktionsformer afprøvet både
med en naturlig population samt med P17 og NOX. Ud fra de udførte undersøgelser blev det
besluttet at udføre ekstraktionen uden tilstedeværelser af aktive bakterier, med
efterfølgende AOC-bestemmelse på ekstraktet. Undersøgelserne indikerede, at kun P17
kunne omsætte de stoffer, der blev afgivet fra materialerne, hvorfor AOC-bestemmelser på
ekstrakter følgelig blev udført med P17 som eneste testbakterie.
De eksperimentelle undersøgelser ledte til nedenstående procedure. Hvor intet andet
er anført er de eksperimentelle undersøgelser udført efter samme fremgangsmåde.
Metoden kan opsumeres til bestående af to trin:
- Ekstraktion af materiale uden tilstedeværelse af bakterier
- AOC-bestemmelse på det opnåede ekstrakt med P17
Alt arbejde med åbne prøver og podekulturer foregår i sterilbænk.
Testvandet afhentes direkte på vandværket dagen før eller på selve dagen, hvor
testen startes. Testvandet udvejes til 200± 2 mL i 250 mL 'red
cap'-flasker (PYREX) med 'red cap'-låg med teflonindlæg (SCHOTT DURAN). Vandets
naturlige bakteriepopulation inaktiveres ved pasteurisering ved 60°
C (med flaskernes låg skruet helt til):
 | Hurtig opvarmning til 60° C i 90°
C vandbad (temperatur følges i referenceflaske). |
 | Henstand 45 minutter i 60° C varmeovn. |
Testvandet afkøles og opbevares på køl indtil påbegyndelse af test.
I undersøgelsen indgår kun materiale uden skrift, som ikke har været påsat tape
eller lignende, og fra produktionssted til test tages der de nødvendige forholdsregler
til at sikre at materialet ikke kontamineres med eksternt organisk stof. Testmaterialer
tilsendes direkte fra producenterne indpakket i stanniol eller pap, og på
produktionsstedet er rør-emnerne håndteret under brug af engangshandsker. Testmaterialer
tilskæres på et underlag af stanniol med renset værktøj reserveret til arbejdet, idet
der bæres vinyl-engangshansker under arbejdet.
Materialet udskæres (med rørskærer, skalpel eller nedstryger) i teststykker med et
totalt overfladeareal på 100 cm2 , svarende til et S/V-forhold i
testsituationen på 0,5 cm-1. Hvert enkelt teststykke påsættes en ballast af
rustfrit stålnet og forbehandles i flasker ved følgende procedure:
For-vask:
 | Henstand 24± 1h i postevand ved stuetemperatur i mørke, ved
et S/V-forhold svarende til testsituationen. |
 | Skylning i rindende postevand (1 L/min) i 60± 10 min i de
enkelte flasker. |
Den naturlige population på teststykkerne inaktiveres ved pasteurisering i postevand
ved 60° C og et S/V-forhold svarende til testsituationen (med
flaskernes låg skruet helt til):
 | Opvarmning til 60° C i 60° C
vandbad (temperatur følges i referenceflaske) 1. |
 | Henstand 45 minutter i 60° C varmeovn. |
(Flere sæt teststykker af samme materiale kan forbehandles i samme flaske, så længe
det korrekte S/V-forhold fastholdes). Efter afkøling tages teststykkerne op med en
pincet, skylles ved overhældning med pasteuriseret testvand og overføres til
testflaskerne med pasteuriseret testvand. Flaskerne indpakkes i stanniol for at hindre
algevækst og fotokemisk nedbrydning.
Alle prøver opstilles i triplikat med tilhørende blindprøver med pasteuriseret
testvand og ballastmateriale.
Teststykkerne ekstraheres i 15 døgn ved 20± 2° C under horisontal omrystning (95 omdrejninger/min - hvilket ikke
medfører kontakt imellem låg og vandfase). Efter endt ekstraktion tages teststykkerne op
med en pincet, og ekstrakter og blindprøver podes med P17 til en startkoncentration på
200-500 CFU/mL. Ekstrakter og blindprøver inkuberes ved 15°
C, hvorunder bakterieantallet følges ved bestemmelse af kimtal dag 0, 3, 4, 5, 7, 10, 15.
Såfremt vækstkurverne ikke stagnerer eller er faldet dag 15 bestemmes kimtal endvidere
dag 20 og eventuelt dag 25.
Kimtal bestemmes ved overfladeudsæd på R2A-agar, hvor pippeteringer
foretages med finnpipetter med engangsspidser af polypropylen. Inden prøveudtagning fra
en flaske føres denne i kraftige horisontale cirkelbevægelser for at homogenisere
prøven. Når fortynding af en prøve er nødvendig, fremstilles en ti-fold
fortyndingsrække ved at overføre 100 mL prøve til
eppendorf-rør med 900 mL autoklaveret postevand. Der omblandes
ved vortex-mixning, og herfra fremstilles den videre fortyndingsrække på samme vis,
indtil de ønskede fortyndinger er opnået. Skal den ufortyndede prøve udplades, udtages
der i stedet 300 m L prøve til tomt eppendorf-rør, hvorfra
udpladning fortages og den videre fortyndingsrække fremstilles.
Fra tre fortyndinger udplades 50 mL i triplikater, ialt 9
plader. Kolonier optælles efter 2-3 døgns inkubation ved 25°
C, idet plader med over 200 kolonier generelt ikke optælles.
3.3.1.1 Rensningsprocedurer for udstyr
De anvendte flasker, låg og finnpipetter anvendes udelukkende til undersøgelse af
AOC-afgivelse for at hindre, at anden tidligere anvendelse medfører afgivelse af organisk
stof eller stof, der hæmmer bakterievækst.
For at fjerne organisk kulstof rengøres testflasker og låg inden brug ved følgende
procedure:
 | Skylles med MilliQ-vand |
 | Henstand i 10% salpetersyre i minimum et døgn |
 | Skylles 6 gange med MilliQ-vand |
 | Mundinger dækkes med stanniol |
 | Glasflasker glødes ved 220° C i 5 timer - red
cap-låg ved 180° C i 6 timer |
Pincetter og værktøj til udskæring af materiale renses for organisk kulstof ved
glødning i gasflamme og afkøles inden brug, mens ballastmaterialet glødes ved 220° C i minimum 5 timer.
Til desinficering af arbejdsområde og drigalskispatler må der ikke anvendes sprit, da
dette vil kontaminere prøverne med organisk stof og resultere i forhøjet P17
koncentrationer. Arbejdsområde aftørres med en 0,05% CTMAK-opløsning
(cetyltrimethylammoniumchlorid - giver ikke anledning til forhøjede P17 eller NOX
værdier), og stål-drigalskispatler glødes i gasflamme og afkøles inden brug.
Pipettespidser renses ikke specielt før brug, men tages direkte fra leveringsposer.
Spidser, der skal i direkte kontakt med prøve, pakkes under brug af vinyl-engangshandsker
for at begrænse overførelse af organisk materiale. Eppendorf-rør og pipettespidser
autoklaveres, og tørres derefter ved 80° C.
3.3.1.2 Podekulturer
Separate podekulturer af P17 og NOX fremstilles ved opdyrkning af bakterierne ved 15° C i næringssaltsmedie med 1 mg/L acetat ved 15°
C /van der Kooij et al., 1995/. Bakteriernes vækst følges ved overfladeudsæd på R2A-agar,
indtil et maksimalt bakterieantal er opnået. Herefter opbevares kulturene i køleskab,
hvor de har en holdbarhed på omkring et halvt år.
Kolonital fra alle talte fortyndinger vurderes som et samlet datasæt inden videre
behandling. Afvigere identificeres på et 95% signifikantsniveau ved nedenstående
procedure:
 | For hver fortyndingsrække beregnes for hver enkelt fortynding et forventet kolonital (ei)
ud fra den totale udstrøgne prøvemængde og det totale antal talte kolonier i denne
prøvemængde: |
 |
C: |
å Ci |
W: |
å Wi |
Ci: |
antal kolonier fra enkel udstrygning i fortyndingsrækken |
Wi: |
volumen udstrøget |
 | Ud fra forventningsværdien beregnes den øvre og nedre grænse i et 95%
konfidensinterval. |
 | Afvigere identificeres ved sammenligning med konfidensintervallet. Der ses bort fra
udstrygninger med under 6 kolonier, da posionfordelingen kun kan antages at være
gældende ved kolonital højere end 5. |
Såfremt datasættets afvigere skyldes den naturlige variation på bestemmelsen, bør
metoden identificere omkring 5% af kolonitallene som afvigere (2,5-7,5% accepteres).
Afvigere bør generelt ikke kasseres, men vurderes i hvert enkelt tilfælde, da der ikke
kan ses bort fra den naturlige variation. Metoden anvendes således til at vurdere
datasættes kvalitet inden videre beregning. /Boe-Hansen, 1998a/
For hver enkelt bestemmelse beregnes kimtallet som et vægtet gennemsnit ud fra den
totale udstrøgne prøvemængde og det totale antal talte kolonier i prøvemængden. Den
observerede spredning (error of mean, E.O.M.) på kimtallet følger en Poisonfordeling og
vil følgelig være . Kimtallet bestemmes således som:
E.O.M.-værdien angiver således ikke hvor stor spredning, der er imellem replika, men
angiver en præcision af bestemmelsen, idet et højere antal talte kolonier giver en
større præcision på bestemmelsen.
De beregnede kimtal omsættes til AOC-værdier ved brug af udbyttekonstanterne angivet
i afsnit 3.1
Ud fra de beregnede kimtal optegnes vækstkurver for tripikate prøver. Kurverne
sammenlignes for at vurdere kvaliteten af de opnåede ekstrakter. Et stærkt afvigende
vækstkurveforløb i forhold til de to øvrige prøver indikerer afvigende forhold, som
gør at ekstraktet ikke repræsenterer afgivelsen fra materialet. Ligeledes vil en stærkt
afvigende høj værdi indikere en forurening med eksternt kulstof. Prøver med sådanne
stærkt afvigende vækstkurveforløb ses der bort fra. Ligeledes ses der bort fra en
prøve, hvis denne er kontamineret med uønskede bakterier.
Ved beregning af det gennemsnitlige vækstkurveforløb ud fra triplikate (duplikate)
prøver opnås den bedste bestemmelse af den gennemsnitlige kurves beliggenhed ved at gå
tilbage til de oprindelige kolonitællinger. De triplikate prøver betragtes som
fortyndingsrækker, og det vægtede gennemsnit bestemmes over triplikaterne:
Cii: antal kolonier fra enkel udstrygning blandt triplikater
Wii: volumen udstrøget
Når E.O.M. således beregnes på det samlede datamateriale, medregnes ikke variationen
imellem de triplikate prøver.
Der er i dette projekts arbejde ikke fastlagt variationen imellem vækstkurver, da
fastlæggelsen af gennemsnitlige kimtal har været prioriteret højest, og der kun har
været 2-3 vækstkurver.
Hvis bestemmelsen af variationen imellem et større antal vækstkurver i andre
tilfælde prioriteres højere end bestemmelsen af det gennemsnitlige kimtal, kan den
gennemsnitlige vækstkurve beliggenhed bestemmes ud fra en logaritmisk normalfordeling:
På logaritmisk transformerede kimtal beregnes for hvert sæt triplikate prøver et
(aritmetisk) gennemsnit, m , og en spredning, s . Her ud fra bestemmes det gennemsnitlige kimtal ved:
Det tilhørende 95% konfidensinterval vil være skævt fordelt og bestemmes ud fra
t-fordelingen som:
 | hvor n er antallet af replikater og t(3)0,025 = -4,303 og t(2)0,025
= -12,706 /Kotz et al., 1982/. |
1 |
Opvarmningen af vandfasen har kun sekundær betydning i
forbindelse med pasteurisering af teststykkerne. Vandbadet blev derfor holdt på 60° C i stedet for 90° C, som ved ordinær
AOC-bestemmelse. Dette gav en længere opvarmningstid for vandfasen i flaskerne, men det
sikrede, at teststykkerne ikke blev udsat for temperature højere end 60° C. |
Første trin i at fastlægge en ekstraktionsmetode var at afgøre om ekstraktionen af
materialet skulle forløbe med eller uden tilstedeværelsen af testbakterierne. En
mulighed var at ekstraheres materialet uden tilstedeværelse af testbakterier, med en
efterfølgende ordinær AOC-bestemmelse på ekstraktet. En anden mulighed, som i højere
grad ville simulere forholdene i distributionsnet, ville være at ekstrahere materialet
med testbakterierne tilstede, hvorved AOC-værdien bestemmes samtidigt med ekstraktionen.
En tredje mulighed ville være at ekstrahere materialet sammen med en naturlig
drikkevandspopulation, hvilket ville give en endnu bedre simulering af forholdene i et
distributionsnet. Dette ville dog ikke resultere i en konkret AOC-værdi, men det
maksimalt opnåede bakterieantal ville i stedet kunne anvendes som mål for
eftervækstpotentialet. For at afgøre hvilken type ekstraktion af materialet der var mest
hensigtsmæssig, blev følgende tre ekstraktionsmetoder afprøvet:
 | Ekstraktion uden aktive bakterier (med efterfølgende AOC-bestemmelse på ekstraktet) |
 | Ekstraktion med P17 og NOX (samtidig AOC-bestemmelse) |
 | Ekstraktion med en naturlig population (som kontrol blev AOC bestemt efterfølgende) |
De tre ekstraktionsmetoder blev afprøvet i serier opdelt i to faser på hver 20 døgn.
Teststykker blev ekstraheret fra dag 0 til dag 20, hvor stoffer fra materialerne kunne
afgives til vandfasen. Dag 20 blev teststykkerne taget op, hvorved der fra dag 20 til dag
40 kunne måles AOC på ekstrakterne uden teststykkernes tilstedeværelse.
Teststykker blev ekstraheret ved 10° C, mens ekstrakterne
blev inkuberet ved 15° C. Testvandet blev i dette forsøg
tilsat 10 m g KH2PO4-P/L inden brug for
at hindre, at væksten skulle blive begrænset som følge af phosphormangel.
I Figur 3 er angivet en principskitse af undersøgelsen af ekstraktionsmetoder.
Forbehandlede teststykker med ballastmateriale (pasteuriseret i 30 minutter) blev
ekstraheret i pasteuriseret testvand uden omrystning i mørke ved 10°
C i 20 døgn. Dag 20 blev det ved en pladespredning kontrolleret, at der ikke var aktive
bakterier tilstede i vandfasen. Derefter blev testmaterialet taget op, og ekstrakterne
blev podet med P17 og NOX til AOC-bestemmelse. Ekstrakterne blev inkuberet i mørke ved 15° C i yderligere 20 døgn, hvor kimtallet blev bestemt på R2A-agar
dag 20, 25, 27, 30, 35, 40.
Forbehandlede teststykker med ballastmateriale (pasteuriseret i 30 minutter) blev
ekstraheret i pasteuriseret testvand, der dag 0 blev podet med P17 og NOX, så
ekstraktionen forløb samtidig med væksten af P17 og NOX. Den kombinerede ekstraktion og
AOC-bestemmelse forløb uden omrystning i mørke ved 10° C i
20 døgn, hvor kimtallet blev bestemt på R2A-agar dag 0, 5, 7, 10, 15, 20.
Forbehandlede teststykker med ballastmateriale (pasteuriseret i 30 minutter) blev
ekstraheret i pasteuriseret testvand, der dag 0 blev podet med testvand i forholdet 9:1
(180 mL pasteuriseret testvand og 20 mL testvand). Ekstraktionen forløb efterfølgende
ved 10° C i 20 døgn, hvorunder kimtallet for den naturlige
population bestemt på R2A-agar (14 døgn ved 25°
C) dag 0, 5, 7, 10, 15, 20. Dag 20 blev testmaterialet taget op. For at undersøge om der
var tilgængeligt AOC tilstede efter denne inkubering, blev ekstrakterne pasteuriseret som
ved en vanlig AOC-bestemmelse, podet med P17 og NOX og derefter inkuberet i mørke ved 15° C i endnu 20 døgn, hvor kimtallet blev bestemt på R2A-agar
dag 20, 25, 27, 30, 35, 40.
Figur 3:
Principskitse af undersøgelsen af ekstraktionsmetoder: Ekstraktion uden
aktive bakterier; Ekstraktion med P17 og NOX; Ekstraktion med en naturlig population.
Jævnfør ovenstående tekst.
Ekstraktionsmetoderne blev undersøgt med to materiale-typer: hvidt PEX-rør og blåt
PEM(1)-rør. I hvert PEX-rørstykke blev en glaskugle (renset på samme måde
som testflaskerne) sat i spænd i den ene ende som ballastmateriale, men enkelte af
rørstykkerne blev så påvirket af pasteuristeringen, at spændet på glaskuglerne ikke
kunne holdes. Dette blev dog skønnet ikke at have den store indflydelse på forsøget, da
mindre end 2% af de pågældende rørs totale overflade ikke var vanddækket. Til
PEM-rørstykkerne blev der anvendt net af rustfrit stål som ballastmateriale.
Bakteriekoncentrationer og AOC-værdier er angivet i Bilag H.
I ekstrakterne af PEX og blåt PEM(1) fremstillet uden aktive bakterier
nåede vækstkurverne for P17 og NOX et maksimum, hvorefter de stagnerede eller faldt
inden for 20 døgn (Figur 4 og Figur 5). Koncentrationerne af P17 var højere i
ekstrakterne end i blindprøverne, mens der ikke var den store forskel på
koncentrationerne af NOX imellem ekstrakter og blindprøver.
Figur 4:
Vækstkurver for P17 (A) og NOX (B) i ekstrakter af PEX materiale og i
tilhørende blindprøver. Ekstraktionen forløb over 20 døgn ved 10°
C uden omrystning. Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne podet med P17 og NOX
og inkuberet ved 15° C.
Ved beregning af gennemsnitlige AOC-værdier (Tabel 5) var AOCTotal for
begge materialer 19 m g acetat-C/L, men for PEM materialet var
AOCNOX lavere i ekstrakterne end i de tilhørende blindprøver. Dette kan
forklares ved den kraftige vækst af P17 i ekstrakterne. De mange P17 har omsat stofferne,
som P17 og NOX konkurrerer om, og har derved ikke levnet substrat til de færre NOX. Dette
har ikke været tilfælde med blindprøverne, hvor P17 og NOX har haft mere ligeværdige
konkurrenceforhold.
Figur 5:
Vækstkurver for P17 (A) og NOX (B) i ekstrakter af blåt PEM(1)
materiale og tilhørende blindprøver. Ekstraktionen forløb over 20 døgn ved 10° C uden omrystning. Efter materialet var taget op, blev
ekstrakterne podet med P17 og NOX og inkuberet ved 15° C.
Tabel 5:
Gennemsnitlige AOC-værdier ved AOC-bestemmelse på ekstrakt: Ekstraktionen
forløb over 20 døgn ved 10° C uden omrystning og ved et
S/V-forhold på 0,5 cm-1. Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne
podet med P17 og NOX og inkuberet ved 15° C.
|
[mg acetat-C/L] |
Materiale |
+
blindværdi |
-
blindværdi |
|
AOCP17 |
AOCNOX |
AOCTotal |
AOCP17 |
AOCNOX |
AOCTotal |
PEX
Blind
Blå PEM(1)
Blind |
22
5
29
6 |
6
4
4
7 |
28
9
32
13 |
17
22
|
2
-3
|
19
19
|
I ekstrakter af PEX og blå PEM(1) fremstillet med samtidig AOC-bestemmelse
stagnerede eller faldt vækstkurverne for P17 og NOX ikke inden for den 20 døgns periode
(Figur 6 og Figur 7). Der blev opnået en smule højere P17 koncentrationer i ekstrakterne
end i blindprøverne, hvilket ikke gjorde sig gældende for NOX koncentrationerne.
Figur 6:
Vækstkurver for P17 (A) og NOX (B) i ekstrakter under ekstraktion af PEX
materiale og i tilhørende blindprøver. Ekstraktionen forløb under tilstedeværelse af
P17 og NOX over 20 døgn ved 10° C uden omrystning.
Tabel 6:
Gennemsnitlige AOC-værdier ved samtidig ekstraktion og AOC-bestemmelse:
Ekstraktionen forløb under tilstedeværelse af P17 og NOX over 20 døgn ved 10° C uden omrystning og ved et S/V-forhold på 0,5 cm-1.
|
[mg acetat-C/L] |
Materiale |
+
blindværdi |
-
blindværdi |
|
AOCP17 |
AOCNOX |
AOCTotal |
AOCP17 |
AOCNOX |
AOCTotal |
PEX
Blind
Blå PEM(1)
Blind |
6
2
5
1 |
5
5
2
4 |
11
7
7
5 |
4
4
|
0
-2
|
4
2
|
Ved beregning af maksimale gennemsnitlige AOC-værdier (Tabel 6) var AOCTotal
for PEX materialet 4 m g acetat-C/L og 2 m
g acetat-C/L for blåt PEM(1), hvilket kun var 10-20% af niveauet fundet ved
ekstraktion uden aktive bakterier (Tabel 5). Bestemmelsen af AOC-værdier i ekstrakter
fremstillet uden aktive bakterier forløb som en normal AOC-bestemmelse ved 15° C, mens AOC-bestemmelsen med samtidig ekstraktion blev udført ved
10° C. Vækstforholdene for P17 og NOX var således forskellig
i de to undersøgelser, og da væksthastigheden af de to bakteriestammer formentlig er
lavere ved 10° C end ved 15° C, er
det muligt, at bakterierne ikke nåede vækstmaksimum inden for testperiodens 20 døgn.
Det var således nok i højere grad den lavere vækststemperatur end ekstraktionsmetoden,
der var årsag til de lavere AOC-værdier.
Figur 7:
Vækstkurver for P17 (A) og NOX (B) i ekstrakter under ekstraktion af blåt PEM(1)
materiale og i tilhørende blindprøver. Ekstraktionen forløb under tilstedeværelse af
P17 og NOX over 20 døgn ved 10° C uden omrystning.
I ekstrakter fremstillet under tilstedeværelse af en naturlig population formede
vækstkurverne for naturlige population sig anderledes end for P17 og NOX, idet den
naturlige population voksede gennem hele 20 døgnsperioden (Figur 8). Dette kan skyldes,
at startkoncentrationerne af den naturlige population var langt lavere (<15 CFU/mL) end
startkoncentrationerne af P17 og NOX (200-500 CFU/mL).
På trods af at en maksimal bakteriekoncentration formentlig ikke blev opnået, kunne
der dag 20 registreres forskel på ekstrakter og blindprøver (Tabel 7). Der var lidt
højere bakteriekoncentrationer i ekstrakterne end i blindprøverne, hvorved afgivelser
fra de testede materialer understøttede væksten af den naturlige population.
Tabel 7:
Bakteriekoncentrationer af en naturlig population i ekstrakter med materiale
efter 20 døgns ekstraktion ved 10° C uden omrystning og et
S/V-forhold på 0,5 cm-1.
|
PEX |
Blind |
Blå PEM(1) |
Blind |
Bakteriekoncentration
[´ 104 CFU/mL] |
4,0
7,8
4,9 |
1,9
0,7 |
4,2
5,9 |
4,8
3,0
3,4 |
Figur 8:
Vækstkurver for en naturlig population under ekstraktion af PEX materiale
(A) og blåt PEM(1) materiale (B). Ekstraktionen forløb ved 10° C uden omrystning.
Da vækstkurverne for den naturlige population ikke stagnerede eller faldt gennem 20
døgn, var alt tilgængeligt substrat formodentligt ikke blevet omsat. Dette blev
bekræftet ved den efterfølgende AOC-bestemmelse. Denne blev foretaget dag 20, efter at
teststykkerne var taget op og alle ekstrakterne var pasteuriseret på ny. Der var
tilgængeligt substrat nok tilbage i vandfasen til, at både P17 og NOX kunne øge deres
bakteriekoncentrationer.
Vækstkurverne for P17 og NOX i de pasteuriserede ekstrakter (Figur 9 og Figur 10)
havde samme forløb, som vækstkurverne i ekstrakterne fremstillet uden aktive bakterier
(Figur 4 og Figur 5). Ligeledes var koncentrationen af P17 højere i ekstrakterne end i
blindprøverne. Bakteriekoncentrationerne af både P17 og NOX lå på et lavere niveau i
samtlige pasteuriserede ekstrakter, end i ekstrakter fremstillet uden aktive bakterier,
hvilke indikerede, at den naturlige population havde kunne omsætte et bredt spektrum af
de organiske forbindelser.
Ved beregning af maksimale gennemsnitlig AOC-værdier (Tabel 8) var der efter den
naturlige populations vækst et bidrag fra materialet tilbage på 3 m
g acetat-C/L for PEX og 18m g acetat-C/L for blåt PEM(1).
For ekstrakter fremstillet uden aktive bakterier blev der for begge materialer opnået 19 m g acetat-C/L (Tabel 5). Den naturlige population kunne således i
langt højere grad omsætte stoffer frigivet fra PEX materialet end fra det blå PEM(1)
materiale.
Figur 9:
Vækstkurver for P17 (A) og NOX (B) i ekstrakter af PEX materiale fremstillet
under tilstedeværelse af en naturlig population og i tilhørende blindprøver.
Ekstraktionen forløb over 20 døgn ved 10° C uden omrystning.
Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne pasteuriseret, podet med P17 og NOX og
inkuberet ved 15° C.
Tabel 8:
Gennemsnitlige AOC-værdier i ekstrakter fremstillet under tilstedeværelse
af en naturlig population. Ekstraktionen blev udført over 20 døgn ved 10° C uden omrystning og ved et S/V-forhold på 0,5 cm-1.
Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne pasteuriseret, podet med P17 og NOX og
inkuberet ved 15° C.
|
[mg acetat-C/L] |
Materiale |
+
blindværdi |
-
blindværdi |
|
AOCP17 |
AOCNOX |
AOCTotal |
AOCP17 |
AOCNOX |
AOCTotal |
PEX
Blind
Blå PEM(1)
Blind |
5
2
18
3 |
3
3
6
3 |
8
4
24
6 |
3
15
|
0
3
|
3
18
|
Figur 10:
Vækstkurver for P17 (A) og NOX (B) i ekstrakter af blåt PEM(1)
materiale fremstillet under tilstedeværelse af en naturlig population og tilhørende
blindprøver. Ekstraktionen forløb over 20 døgn ved 10° C
uden omrystning. Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne pasteuriseret, podet med
P17 og NOX og inkuberet ved 15° C.
AOC-værdier opnået ved samtidig ekstraktion og AOC-bestemmelse var lavere end
AOC-værdier i ekstrakter fremstillet uden aktive bakterier. Foruden den allerede omtalte
temperatureffekt på bakteriernes væksthastighed er der et andet forhold, der kan have
haft betydning. AOC-metoden er designet ud fra, at bakterierne har adgang til den totale
mængde substrat fra start (AOC-bestemmelse på ekstrakt). Tilføres substratet i stedet
over tid (samtidig ekstraktion og AOC-bestemmelse), vil bakterierne vokse i takt med at
substratet tilføres, hvilket giver et andet vækstforløb. Dette kunne der korrigeres for
ved at fastlægge udbyttekonstanterne på samme måde. En sådan løsning vil dog være
kompliceret at gennemføre i praksis, og da hastigheden, hvormed substratet afgives,
sandsynligvis varierer imellem forskellig materialer; vil dette ikke være en brugbar
løsning.
I henhold til migrationsstandarden /DS/EN 852-1, 1997/ testes varmtvandsinstallationer
ved 60° C. Ved denne temperatur vil det ikke være muligt at
udføre ekstraktionerne sammen med aktive bakterier (medmindre der vælges termofile
stammer). Fremstilles der vandige ekstrakter, kan testtemperatur derimod vælges
vilkårligt, idet ekstraktet kan fremstilles ved den ønskede temperatur, hvorefter
AOC-bestemmelsen udføres ved 15° C. Dette giver samtidig
mulighed for at ekstrahere materialer under andre forhold, hvor bakterier ikke kan vokse
f.eks. ved høje klorkoncentrationer eller ved høj eller lav pH. Ekstraktionen udføres
under de ønskede forhold, og efter afkklorering af vandet eller indstilling af pH kan
AOC-bestemmelsen udføres med testbakterierne.
P17 kan omsætte aminosyrer, letomsættelige carboxylsyrer, carbonhydrater, alkoholer
og aromatiske forbindelser, mens NOX kan omsætte de svært-omsættelige carboxylsyrer
såsom format, oxalat, glycollat og glyoxylat /van der Kooij et al., 1995/. De
forbindelser man kan forvente afgivet fra polymere materialer, er således overvejende
stoffer som P17 kan vokse på, hvilket stemmer overens med resultaterne fra undersøgelsen
af ekstrationsmetoder. Materialernes eftervækstpotentiale kan dermed med rimelighed
forventes fastlagt som forskellen i AOCP17 imellem ekstrakter og blindprøver.
Dette betyder, at undersøgelserne vil kunne udføres med P17 som eneste testbakterie,
hvilket vil medføre nedenstående fordele:
 | AOCP17-værdier kan sammenlignes direkte imellem prøver
- da P17 og NOX konkurrerer om de stoffer begge bakteriestammer kan omsætte, vil
forholdet imellem startkoncentrationerne af de to bakteriestammer have indflydelse på de
maksimalt opnåede bakterieantal i en prøve /van der Kooij, 1990; Boe-Hansen, 1998b/. |
 | Større præcision på AOCP17-bestemmelsen
- ved AOC-bestemmelser med både P17 og NOX på dansk drikkevand, vil der i reglen vokse
langt flere NOX end P17 op. Ved bestemmelse af kimtal vil fortyndinger med et tælleligt
totalt antal kolonier derfor kun medfører få P17-kolonier, hvilket giver stor usikkerhed
på fastlæggelsen af AOCP17-værdien. |
Ved ekstraktion af materialerne sammen med en naturlig population blev vandet fra
Lyngby vandværk inden anvendelse fortyndet med pasteuriseret testvand for at opnå en
tilpas lav startkoncentration af bakterier. Ved at anvende en relativ lav
startkoncentration af bakterier var det forventet, at der tydeligere kunne ses en effekt
af afgivelserne fra materialerne. En tælling på vand fra Lyngby vandværk foretaget på
et senere tidspunkt viste imidlertid, at dette vand har en naturlig bakteriekoncentration
på omkring 200 CFU/mL. Den foretagne fortynding dag 0 har antageligvis således
resulteret i en startkoncentration af den naturlige bakteriepopulation på ca. 20 CFU/mL,
hvilket var langt lavere end forventet. For at opnå en startkoncentration af den
naturlige bakteriepopulation på samme niveau som P17 og NOX (200-500 CFU/mL), skulle
testvand udtaget på Lyngby vandværk havde været anvendt uden forudgående fortynding.
Den uhensigtsmæssige lave startkoncentration af den naturlige population kan tildels
være skyld i, at der ikke blev opnåede maksimale værdier inden for den 20 døgns
periode. Den lave startkoncentration resulterede i en lav initial væksthastighed, hvilket
betød at lange inkuberingstider ville havde været påkrævet for at opnå maksimale
værdier. Den lave startkoncentration kan endvidere have influeret på hvilke
bakterietyper, der voksede op og dominerede. Hurtigtvoksende stammer ville i langt højere
grad have kunne udkonkurrere langsomtvoksende, end hvis der havde været en større
initial koncentration. Desuden kunne der have manglet bakterier specielt gode til at vokse
på de stoffer, der blev afgivet fra materialerne.
Ekstrakterne fremstillet med en naturlig population tilstede blev pasteuriseret inden
den efterfølgende AOC-bestemmelse. Ved at sammenligne de opnåede AOC-værdier med de
tilsvarende værdier opnået i ekstrakterne fremstillet uden aktive bakterier, kan det
konstanteres, at pasteurisering af en vandprøve ikke frigiver en betydelig mængde AOC
fra de døde celler. En vandprøves naturlige indhold af bakterier har således ikke nogen
indflydelse på den AOC-værdi, der måles i prøven.
I tre af CEN-metoderne gennemgået i kapitel 2 er én af parametrene til fastlæggelse
af eftervækstpotentialet mængden af fasthæftet bakterier på overfladerne.
Teststykkerne af PEX og Blå PEM(1) fra ekstraktionen sammen med P17 og NOX og
fra ekstraktionen sammen med en naturlig population blev efter endt ekstraktion undersøgt
for fasthæftede bakterier /Corfitzen, 1999/. De fundne bakterieniveauer var af en så
lille størrelsesorden, at de kunne tilskrives, at der sad en vandfilm tilbage på
teststykkerne efter optagning. En kontaktperiode på 20 døgn ved 10°
C var således ikke tilstrækkelig til, at et betydende antal bakterier hæftede på
materialeoverfladerne. Fasthæftede bakterier var således ikke årsag til forskelle
imellem ekstraktionsmetoder, og afgivelsen fra materialerne kan reelt fastlægges ved
måling på vandfasen. Grunden til at der ikke blev dannet biofilm på
materialeoverfladerne var sandsynligvis den korte ekstraktionstid. For f.eks. KIWA metoden
vil der ikke kunne måles biofilm på materialet før 100-200 døgn efter podning.
Sammenholdt med de phosphor-koncentrationer, der generelt er i dansk drikkevand, ville
de observerede bakterieantal næppe give anledning til phosphor-mangel (idet bakterierne
generelt behøver C, N og P i forholdet 100:10:1). Det blev derfor besluttet ikke at
tilsætte phosphor til testvandet. Kontamineringsrisikoen forbundet med tilsætningen af
phosphor ville da blive elimineret.
På baggrund af de opnåede resultater fra undersøgelserne med PEX og blåt PEM(1)
er det hensigtsmæssigt at fastlægge polymere materialers eftervækstpotentiale som
AOC-værdien i et vandigt ekstrakt af materialet fremstillet uden aktive bakterier. Dette
giver mulighed for at anvende vilkårlige testforhold og forenkler tolkningen af
bakteriekoncentrationer. AOC-bestemmelsen kan med fordel udføres med P17 alene, da NOX
tilsyneladende ikke kan udnytte de stoffer, som bliver afgivet fra de undersøgte polymere
materialer.
Skal eftervækstpotentialet bestemmes ved brug af en naturlig population, skal
koncentrationen af aktive bakterier i vandet ikke fortyndes før brug.
Det kunne ikke på forhånd udelukkes, at pasteurisering af teststykkerne ved 60° C ville påvirke materialerne, så afgivelsen ville forløbe
anderledes end i den virkelige brugssituation. Desuden var der risiko for, at en betydelig
del af den mulige afgivelse fra materialerne ville foregå under opvarmningen, og derved
ikke blive registreret ved den egentlige ekstraktion. Der blev derfor afprøvet en
alternativ metode til desinfektion af teststykkerne.
Klorforbindelser anvendes ved desinfektion af distributionsnet, hvorfor teststykkerne
alternativt kunne desinficeres ved henstand i en vandig kloropløsning. Klor kan dog også
kunne påvirke materialerne, idet klorforbindelser generelt er kraftigt oxiderende.
For at kunne påvise en eventuel effekt af desinfektion blev der anvendt en kontrol i
form af materiale, der ikke blev desinficeret. Dermed kunne undersøgelsen ikke udføres
med en renkultur, og der blev i stedet anvendt testvandets naturlige population.
Testvandet blev således ikke pasteuriseret inden anvendelse, og ekstraktion og væksten
af den naturlige population forløb således samtidig.
I forventning om at sikre et tydeligt respons blev der anvendt et S/V-forhold på 1,0
cm-1. Alle teststykker blev for-vasket efter proceduren angivet i afsnit 3.2.3,
for efterfølgende at gennemgå én af følgende type videre behandling (jævnfør
principskitsen af undersøgelsen på Figur 11):
Desinfektion af teststykker ved kloring:
 | Henstand et døgn i en vandig kloropløsning |
 | Grundig skylning ved overhældning med upasteuriseret testvand |
Desinfektion af teststykker ved pasteurisering:
For at forbehandle alle teststykker ens henstod teststykkerne i postevand indtil
pasteuriseringen, dvs.:
 | Henstand i postevand i et døgn minus pasteuriseringstiden |
 | Pasteurisering i postevand (60° C, 30 minutter) |
 | Grundig skylning ved overhældning med upasteuriseret testvand |
Ingen desinfektion af teststykker:
For at forbehandle alle teststykker ens henstod teststykkerne også her yderligere i
postevand:
 | Henstand et døgn i postevand |
 | Grundig skylning ved overhældning med upasteuriseret testvand |
Efter skylningen i upasteuriseret testvand blev teststykkerne overført til testflasker
med upasteuriseret testvand. Blindprøver omfattede ballastmateriale forbehandlet uden
desinfektion, idet der blev antaget, at de forskellige typer desinfektion ikke havde
indflydelse på ballastmaterialet. Undersøgelsen blev udført af to omgange med to
forskellige materialer og klorkoncentrationer:
Lav klorkoncentration
Undersøgelsen blev udført med blåt PEM(1) materiale og med en 1 mg/L
kloropløsning (vandig opløsning af Ca(OCl)2 indeholdende 35% aktivt klor),
svarende til opløsning anvendt til desinfektion af testudstyr af Bellen et al. /1993/.
Bakterieantallet blev fulgt over 20 dages ekstraktion ved 10°
C i mørke, hvor flaskerne henstod uden omrystning.
Høj klorkoncentration
Undersøgelsen blev udført med sort PEM materiale og med en 22 mg/L kloropløsning
(fortyndet natriumhypoklorit-opløsning indeholdende 1% aktivt chor), svarende til
koncentration anvendt ved desinfektion af ledningsnet. Bakterieantallet blev fulgt over 55
døgns ekstraktion ved 10° C i mørke med omrystning (95
omdrejninger/min).
Kimtalsbestemmelser blev udført som ved en AOC-bestemmelse, og udstrygningerne blev
inkuberet ved 25° C i 14 døgn.
Figur 11:
Principskitse af undersøgelsen af desinfektionsmetoder, jævnfør
ovenstående tekst.
Bakteriekoncentrationer for den naturlige population er angivet i Bilag H.
Figur 12:
Vækstkurver for en naturlig population i ekstrakter og blindprøver under
ekstraktion af materiale. Ekstraktionen forløb ved 10° C ved
et S/V-forhold på 1,0 cm-1, hvor materialet dels ikke var desinficeret og dels
desinficeret ved pasteurisering eller ved henstand i en kloropløsning.
A: blåt PEM(1) materiale, 1 mg/L kloropløsning, ekstraktionen forløb uden
omrystning.
B: sort PEM materiale, 22 mg/L kloropløsning, ekstraktionen forløb med omrystning.
Kloropløsningen på 1 mg/L var ikke tilstrækkelig til at desinficere teststykkerne,
idet der ved en udpladning kunne konstateres aktive bakterier i kloropløsningen efter et
døgns henstand (data ikke vist). Under ekstraktionen af blå PEM(1) i
upasteuriseret testvand stagnerede vækstkurverne for den naturlige population ikke i
løbet af testperioden (Figur 12A), og det kunne således ikke antages, at maksimale
bakteriekoncentrationer blev opnået. Der var en mindre forskel på
bakteriekoncentrationerne i ekstrakter og blindprøver. Dag 20 var der statistisk
signifikant flere bakterier i ekstrakter end i blindprøver testet ved en ensidet
variansanalyse på 5 % signifikansniveau.
Sammenlignes bakteriekoncentrationerne for dag 20 (Tabel 9), var der en vis gruppering
efter typen af behandling, hvor ingen desinfektion af teststykkerne gav de
højeste bakteriekoncentrationer og pasteurisering de laveste. Denne
gruppering var dog ikke statistisk signifikant på 5% signifikansniveau ved en ensidet
variansanalyse. Der var således ingen væsentlig effekt af desinfektion på
bakteriekoncentrationerne.
Tabel 9:
Bakteriekoncentrationer af en naturlig population i ekstrakter med blåt PEM(1)
materiale og tilhørende blindprøver efter 20 døgns ekstraktion ved 10° C uden omrystning og ved et S/V-forhold på 1,0 cm-1.
Materialet var dels ikke desinficeret og dels desinficeret ved pasteurisering eller ved
henstand i en 1 mg/L kloropløsning.
|
Behandling
af testmateriale |
|
|
Kloring 1 mg/L |
Pasteu-
risering |
Ingen Desinfektion |
Blind |
Bakterie-
koncentration
[´ 105 CFU/mL] |
2,3
2,1
2,5 |
2,7
1,7
1,9 |
2,7
2,2
2,8 |
1,2
1,4
|
Kloropløsningen på 22 mg/L var tilsyneladende tilstrækkelig til at desinficere
teststykkerne, idet der ved en udpladning ikke kunne konstanteres aktive bakterier i
kloropløsingen efter et døgns henstand (data ikke vist). Under ekstraktionen af sort PEM
i upasteuriseret testvand nåede vækstkurverne for den naturlige population et relativt
højt bakterieantal, hvorefter kurverne faldt (Figur 12B), hvilket var et andet forløb
end fra undersøgelsen med blåt PEM(1) materiale.
Tabel 10:
Maksimale bakteriekoncentrationer af en naturlig population i ekstrakter og i
tilhørende blindprøver under ekstraktion af sort PEM materiale ved 10°
C med omrystning og et S/V-forhold på 1,0 cm-1. Materialet var dels ikke
desinficeret og dels desinficeret ved pasteurisering eller ved henstand i en 22 mg/L
kloropløsning.
|
Behandling
af testmateriale |
|
|
Kloring 22 mg/L |
Pasteu-
risering |
Ingen desinfektion |
Blind |
Bakterie-
koncentration
[´ 105 CFU/mL] |
11,3
12,0
13,2 |
7,9
12,2
14,5 |
7,3
1,9
(27) |
3,5
1,1
1,1 |
Sammenlignes de maksimale bakteriekoncentrationer (Tabel 10), var der acceptabel
overensstemmelse imellem replika, med undtagelse af ekstraker med 'ingen behandling' af
testmaterialet. Medtages alle data vil der ikke være statistisk signifikant forskel ved
en ensidet variansanalyse på 5% signifikansniveau imellem behandlingstyper. Hvis der ses
bort fra værdien på 27*105 CFU/mL for 'ingen desinfektion' var
bakteriekoncentrationerne lavere for 'ingen desinfektion' end for desinfektion, mens der
ikke var forskel på de to desinfektionsmetoder. Ekstrakterne havde i begge tilfælde
højere bakteriekoncentrationer end blindprøverne.
Desinfektion havde ingen effekt på afgivelsen fra blåt PEM(1) materiale
ved undersøgelsen med 1 mg Cl2/L. For undersøgelsen med sort PEM materiale og
22 mg Cl2/L var der for stor variation på replika for 'ingen desinfektion'
til, at der entydigt kunne afgøres, hvorvidt der var en effekt af disinfektion. En
eventuel effekt må under alle omstændigheder accepteres, da fremstilling af ekstrakter
uden tilstedeværelse af aktive bakterier kræver desinfektion af testmaterialet.
For begge PEM materialer var der ikke forskel mellem de maksimale
bakteriekoncentrationer som følge af desinfektionsmetoden. Den korte opvarmning og en
eventuel oxidation af overfladerne havde således ingen eller samme effekt på afgivelsen,
og både pasteurisering og kloring kunne således vælges som desinfektionsmetode. Der er
dog en risiko forbundet ved at anvende kloring, da der kan blive overført klorrester med
materialet, hvis teststykkerne ikke skylles grundigt nok efter henstand i
kloropløsningen. Dette kan hæmme bakterievæksten i testflaskerne, og således resultere
i for lave AOC-værdier.
Den store forskel på forløb af vækstkurver i ekstrakterne af henholdsvis blåt PEM(1)
og sort PEM kunne dels skyldes de forskellige materialetyper, men omrystningen under
ekstraktionen af det sorte PEM materiale, kan også have haft effekt. Omrystningen kan
have fjernet de afgivende stoffer fra zonen omkring teststykkerne, hvorved stofferne
hurtige er blevet tilgængelige for den naturlige population.
Foretages en generel sammenligning af vækstkurver for den naturlige bakteriepopulation
og vækstkurver for P17 og NOX, var der større forskel på niveauet af vækstkurverne
imellem ekstrakter og blindprøver ved anvendelse af renkulturer. Anvendelse af
renkulturer øger således følsomheden af afprøvningen, når kimtallet opgøres ved
udpladning på R2A-agar.
Undersøgelserne med blåt og sort PEM materiale viste, at der ikke var forskel på
afgivelsen fra materialerne som følge af, om disse var desinficeret ved pasteurisering
eller ved henstand i kloropløsning. Der blev derfor fortsat med pasteurisering, som
desinfektionsmetode, da denne metode indebærer mindre risiko for introducering af
fejlkilder.
Det blev undersøgt, hvordan afgivelsen fra de polymere materialer forløb over tid. En
kraftig initial afgivelse med en efterfølgende negligibel afgivelse vil kun give
problemer i forbindelse med ibrugtagning af nye rør, hvor der kan tages de nødvendige
forholdsregler. En konstant middelafgivelse over tid vil derimod betyde en konstant
understøttelse af mikrobiologisk vækst, og kan således give anledning til problemer i
ledningsnettet over en længere periode. For at kunne undersøge afgivelsen over tid blev
et materiale ekstraheret sekventielt, ved at ekstrahere det enkelte sæt teststykker af
flere omgange. Desuden blev det undersøgt, om omrystning under ekstraktion af materialet
havde effekt på afgivelsen.
Sort PEM materiale blev ekstraheret med og uden omrystning (95 omdrejninger/min) ved to
sæt S/V-forhold: 0,5 og 1,0 cm-1. Materialet blev ekstraheret i perioder á 15
døgn ved 10° C i mørke.
De forbehandlede teststykker (pasteuriseret i 30 minutter) blev fra dag 0 ekstraheret i
pasteuriseret testvand. Efter endt ekstraktion blev teststykkerne overført til nyt
pasteuriseret testvand, og derefter atter ekstraheret i 15 døgn. Ekstrakterne blev podet
med P17, og derefter inkuberet ved 15° C med
kimtalsbestemmelse på dag 0, 3, 5, 7, 10, 15 og 25. Der blev udført 4 på hinanden
følgende ekstraktioner. I Figur 13 er angivet en principskitse af undersøgelsen med
sekventielle ekstraktioner.
Figur 13:
Principskitse af undersøgelsen med sekventielle ekstraktioner, jævnfør
ovenstående tekst.
Bakteriekoncentrationer og AOCP17-værdier er angivet i Bilag H.
Figur 14:
Gennemsnitlige vækstkurver for P17 og NN i ekstrakter af sort PEM materiale
og i tilhørende blindprøver. De sekventielle ekstraktioner forløb over 15 døgn ved 10° C. Efter materialet var taget op og overført til frisk testvand,
blev ekstrakterne podet med P17 og indkuberet ved 15° C.
A: Vækstkurver i ekstrakter fremstillet uden omrystning.
B: Vækstkurver i ekstrakter fremstillet med omrystning.
C: Vækstkurver i blindprøver fremstillet med omrystning.
Testvandet i det første sæt ekstrakter var kontamineret med en bakterie (herefter
NN), som ikke blev inaktiveret ved pasteurisering i 30 minutter. I testvandet til de
øvrige sæt ekstrakter (dag 15-60) lykkedes det inaktivere NN ved at hæve
pasteuriseringstiden fra 30 til 45 minutter, men NN blev overført med teststykkerne fra
det første sæt ekstrakter til de næste. NN var således tilstede sammen med materialet
under ekstraktion, hvorved ekstraktion ikke foregik uden tilstedeværelse af aktive
bakterier. Dette havde kun mindre betydning, da NN havde meget ringe vækst ved 10° C, og derfor kun var tilstede i små koncentrationer (< 50
CFU/mL) ved afslutningen af hver ekstraktionsperiode. Når ekstrakterne blev overført til
15° C efter podningen med P17, voksede NN til gengæld op på
samme måde som P17. NN dannede 1-2 mm beige-grå kolonier på R2A-agar, og
kunne således let skelnes fra P17, men blev ikke nærmere identificeret.
I Figur 14 er gennemsnitlige vækstkurver for P17 og NN afbilledet for de udførte
ekstraktioner. Kontamineringen med NN medførte, at der ikke kunne beregnes en direkte AOCP17-værdi
for afgivelsen fra materialet, men niveauet for vækstkurverne var relativt konstant fra
1. til 4. ekstrakt.
Tilstedeværelsen af NN komplicerede fortolkningen af resultaterne, da der var et
konkurrenceforhold imellem P17 og NN. I ekstrakterne, hvor der var afgivet stoffer fra
materialet, som P17 kunne udnytte, havde P17 en konkurrencemæssig fordel og opnåede
højere koncentrationer end NN. I blindprøverne kunne NN bedre konkurrere med P17 om de
substrater, begge bakteriestammer kunne omsætte, hvilket medførte, at koncentrationen af
NN var højere i blindprøverne end i ekstrakterne. På denne baggrund kunne forskellen i
bakteriekoncentrationer mellem ekstrakter og blindprøver ikke direkte benyttes til at
fastlægge en AOC-værdi for afgivelsen. Da blindværdierne for P17 fra 1. til 4. sæt
imidlertid lå på et stabilt niveau, kunne det afgøres, hvordan afgivelsen fra
materialet forløb over tid, ved at sammenligne niveauet for vækstkurverne i 1. til 4.
sæt ekstrakter.
Det maksimale antal P17, der blev opnået i ekstrakterne, var på samme niveau i de
fire sæt ekstrakter, hvilket indikerede, at der ikke kun var tale om en initiel
afgivelse, men en kontant afgivelse over de undersøgte 60 døgns ekstraktion.
Sammenlignes ekstrakter fremstillet med og uden omrystning, var der en klar effekt som
følge af omrystning, idet antallet af P17 i ekstrakterne fremstillet med omrystning var
ca. 50% større end i ekstrakter fremstillet uden. Derimod var der ikke den store effekt
af S/V-forhold, idet P17 koncentrationer lå på samme niveau i ekstrakter fremstillet med
S/V-forhold på 0,5 og 1,0 cm-1. Antallet af NN var derimod ikke påvirket af
hverken omrystning eller anvendte S/V-forhold, hvilket - sammenholdt med at der blev
opnået højere koncentrationer af NN i blindprøverne end i ekstrakterne - indikerede, at
NN først og fremmest udnyttede testvandets substrat.
Især for ekstraktioner foretaget med omrystning svingede afgivelsen fra teststykkerne
imellem triplikaterne. Dette kunne imidlertid være et udtryk for, at forløbet for
afgivelsen varierede lidt imellem de enkelte sæt teststykker, men at den samlede
afgivelse over tid ellers i øvrigt kunne være ens. I Tabel 11 er akkumulerede værdier
for maksimale bakteriekoncentrationer beregnet efter det 4. ekstrakt (60 døgns
ekstraktion) for hvert enkelt sæt teststykker, idet samtlige vækstkurver er medtaget.
I nogle af ekstraterne blev vækstmaksimum nået allerede på dag 3. Dette betød, at
de ekstra indførte kimtalsbestemmelser for nogle af ekstrakterne medførte, at der blev
registreret en højere maksimal bakteriekoncentration, end hvis den anden
kimtalsbestemmelse først var blevet udført dag 5. En intensivering af
kimtalsbestemmelserne kan således medføre en generel stigning i registrerede maksimale
bakteriekoncentrationer.
Tabel 11:
Akkumulerede maksimale værdier for bakteriekoncentrationerne i ekstrakter af
sort PEM materiale beregnet efter 60 døgns ekstraktion (4. ekstrakt). Ekstraktionerne
forløb over 15 døgn ved 10° C og ved S/V-forhold på
henholdsvis 0,5 og 1,0 cm-1 med og uden omrystning. Efter materialet var taget
op og overført til frisk testvand, blev ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15° C. De akkumulerede kurver kan ses i Bilag D.
|
Akkumulerede
maksimale bakteriekoncentrationer |
|
HPC [´ 105 CFU/mL]
uden omrystning |
AOCP17
[mg acetat-C/L]
med omrystning |
|
S/V=0,5 cm-1 |
S/V=1,0 cm-1 |
S/V=0,5 cm-1 |
S/V=1,0 cm-1 |
Blind |
|
HPC |
AOCP17 |
HPC |
AOCP17 |
HPC |
AOCP17 |
HPC |
AOCP17 |
HPC |
AOCP17 |
P17
|
4,8
4,7
4,5 |
118
115
109 |
5,2
5,1
5,7 |
126
123
137 |
6,0
7,4
8,0 |
146
181
213 |
3,1
8,0
8,5 |
75
195
206 |
2,1
1,6
1,5 |
52
40
38 |
NN
|
2,1
2,6
2,0 |
|
4,2
2,5
1,9 |
|
1,4
7,0
3,6 |
|
9,6
5,0
1,9 |
|
13,6
14,4
5,9 |
|
De udførte undersøgelser med sort PEM materiale viste, at afgivelsen fra materialet er
konstant over 60 døgn, og således ikke foregår som en kraftig initial afgivelse.
Endvidere blev det klarlagt, at omrystning under ekstraktion øger afgivelsen fra
materialet.
I undersøgelsen med sekventielle ekstraktioner af sort PEM var der ikke den store
forskel i P17 koncentration mellem S/V-forhold på henholdsvis 0,5 og 1,0 cm-1.
For at afklare om afgivelsen fra de polymere materialer afhænger af S/V-forholdet, blev
der udført en række undersøgelser med varierende S/V-forhold.
Indledningsvis blev det undersøgt, om et andet materiale ville give en lige så lille
forskel i P17 koncentration mellem S/V-forhold på 0,5 og 1,0 cm-1 som sort
PEM. Ekstraktionstidens indflydelse på afgivelsens størrelse blev undersøgt ved to
forskellige ekstraktionstider.
For at undersøge S/V-forholdets indflydelse for AOCP17-afgivelsen blev 7
S/V-forhold undersøgt i intervallet 0,07 - 1,38 cm-1 med hovedvægt på de
mindste S/V-forhold. Udvalgte S/V-forhold blev endvidere undersøgt ved en kortere
ekstaktionstid, for at undersøge hvor hurtigt en eventuel mætning kunne indtræde. For
at få en bedre bestemmelse af det maksimale kimtal blev kimtallet bestemt flere gange
under væksten af P17 end ved tidligere undersøgelser.
Figur 15:
Principskitse af undersøgelsen med S/V-forhold på 0,5 og 1,0 cm-1,
jævnfør nedenstående tekst.
Undersøgelsen blev udført med blåt PEM(1) materiale. Der blev opstillet 2
sæt prøver i triplikater: Prøver med S/V-forhold på henholdsvis 0,5 og 1,0 cm-1
(teststykker desinficeret ved 30 minutters pasteurisering) og blindprøver kun med
ballastmateriale. De to sæt prøver blev ekstraheret over henholdsvis 9 og 20 døgn ved
10° C uden omrystning.
Ekstrakterne blev podet med P17 og inkuberet ved 15° C,
hvor væksten af P17 fulgt ved bestemmelse af kimtal dag 0, 5, 7, 10, 15 og 20. Figur 15
angiver en principskitse af forsøgsgangen.
Undersøgelsen blev udført med blåt PEM(2) materiale. Der blev
opstillet prøver i triplikater for S/V-forholdene 0,07; 0,14; 0,27; 0,41; 0,55; 0,69 og
1,38 cm-1 samt blindprøver kun med ballastmateriale. Ekstraktionen forløb
over 15 døgn ved 20° C med omrystning (95 omdrejninger/min).
For S/V-forholdene 0,14 og 0,69 cm-1 blev der (på et senere tidspunkt)
opstillet et ekstra sæt prøver samt blindprøver, der blev ekstraheret i 5 døgn.
Ekstrakterne blev podet med P17 og inkuberet ved 15° C, hvor
kimtallet blev bestemt dag 0, 1, 2, 3, 4, 5, 7, 10, 15 og for 5 døgns ekstraktionerne
endvidere dag 20. Figur 16 angiver en principskitse af forsøgsgangen.
Figur 16:
Principskitse af undersøgelsen med S/V-forhold i intervallet 0,07-1,38 cm-1,
jævnfør ovenstående tekst.
Bakteriekoncentrationer og AOCP17-værdier er angivet i Bilag H.
Vækstkurverne for P17 i 9 døgns ekstraktionerne adskilte sig markant fra
vækstkurverne i 20 døgns ekstraktionerne (Figur 17). Ligeledes var der tydelig forskel
på niveauet for vækstkurver i ekstrakterne og i blindprøverne. Derimod var der ikke den
store forskel som følge af S/V-forhold. Med 9 døgns ekstraktion ved S/V-forhold på 0,5
og 1,0 cm-1 var afgivelsen 24 og 29 mg acetat-C/L,
mens den tilsvarende afgivelse med 20 døgns ekstraktion var 56 og 50 mg
acetat-C/L (jævnfør Tabel 12). Ved et givent S/V-forhold var fluxen således konstant,
idet der blev opnået gennemsnitlige flux af samme størrelsesorden for 9 døgns- og 20
døgns ekstraktionerne (Tabel 13).
Figur 17:
Vækstkurver for P17 i ekstrakter af blåt PEM(1) materiale og i
tilhørende blindprøver. Ekstraktionen forløb ved 10° C uden
omrystning ved S/V-forhold på henholdsvis 0,5 og 1,0 cm-1.
A: 9 døgns ekstraktion; B: 20 døgns ekstraktion. Efter materialet var taget op blev
ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15° C.
Tabel 12:
Gennemsnitlige AOCP17-værdier i ekstrakter af blåt PEM(1)
materiale og i tilhørende blindprøver. Ekstraktionen forløb ved 10°
C uden omrystning ved S/V-forhold på 0,5 og 1,0 cm-1 og ekstraktionsperioder
på 9 og 20 døgn. Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne podet med P17 og
inkuberet ved 15° C.
|
AOCP17
[mg acetat-C/L] |
|
+
blindværdi |
-
blindværdi |
S/V-forhold |
0,5 cm-1 |
1,0 cm-1 |
Blind |
0,5 cm-1 |
1,0 cm-1 |
9 døgns ekstraktion |
27 |
33 |
3 |
24 |
29 |
20 døgns ekstraktion |
59 |
52 |
3 |
56 |
50 |
Tabel 13:
Gennemsnitlige flux for blåt PEM(1) materiale. Ekstraktionen forløb ved
10° C uden omrystning ved S/V-forhold på 0,5 og 1,0 cm-1
og ekstraktionsperioder på 9 og 20 døgn. Efter materialet var taget op, blev
ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15° C.
|
Gennemsnitlig
flux
[´ 10-3 mg acetat-C/cm2/d] |
S/V-forhold |
0,5 cm-1 |
1,0 cm-1 |
9 døgns ekstraktion
20 døgns ekstraktion |
5,2
6,6 |
3,2
2,5 |
Vækstkurverne for P17 i 5 døgns ekstraktionerne adskilte sig markant fra
vækstkurverne i blindprøverne (Figur 18), og 5 døgns ekstraktion var således
tilstrækkeligt til at observere en afgivelse fra materialet. Der var endvidere forskel
på afgivelsen som følge af S/V-forhold; for S/V-forholdet 0,14 cm-1 blev der
målt 23 mg acetat-C/L og for S/V-forholdet 0,69 cm-1
31 mg acetat-C /L (Tabel 14).
Figur 18:
Sammenligning af gennemsnitlige vækstkurver for P17 i ekstrakter af blåt
PEM(2) materiale og i tilhørende blindprøver fremstillet med 5 og 15 døgns
ekstraktion. Ekstraktionen forløb ved 20° C med omrystning.
Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15° C.
Ved S/V-forhold på 0,14 cm-1 var afgivelsen 23 m
g acetat-C/L ved 5 døgns ekstraktion og 14 ug acetat-C/L ved 15 døgns ekstraktion. Ved
S/V-forhold på 0,69 cm-1 var afgivelsen 31 ug acetat-C/L ved 5 døgns
ekstraktion og 57 ug acetat-C/L ved 15 døgns ekstraktion. Afgivelsen var således lavere
med 15 døgns ekstraktion end med 5 døgn ved S/V-forhold på 0,14 cm-1, men
højere ved S/V-forhold på 0,69 cm-1 (Figur 18 og Tabel 14).
Tabel 14:
Gennemsnitlige AOCP17-værdier i ekstrakter af blåt PEM(2)
materiale og tilhørende blindprøver. Ekstraktionen forløb ved 20°
C med omrystning ved varierende S/V-forhold og med ekstraktionsperioder på 5 og 15 døgn.
Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15° C.
|
AOCP17
[mg acetat-C/L] |
|
15
døgns ekstraktion |
5
døgns ekstraktion |
S/V[cm-1] |
+ blindværdi |
- blindværdi |
+ blindværdi |
- blindværdi |
0,07 |
29 |
8 |
|
|
0,14 |
35 |
14 |
38 |
23 |
0,27 |
50 |
29 |
|
|
0,41 |
41 |
20 |
|
|
0,55 |
52 |
31 |
|
|
0,69 |
78 |
57 |
46 |
31 |
1,38 |
71 |
50 |
|
|
Blind |
21 |
- |
15 |
|
Vækstkurverne for P17 i 15 døgns ekstraktionerne adskilte sig ligeledes markant fra
vækstkurverne i blindprøverne, og der var en tydelig effekt af varierende S/V-forhold
(Figur 19). Der var en klar tendens til, at den målte AOCP17-værdi i
vandfasen var større med stigende S/V-forhold (Figur 20 og Tabel 14), dog med en
indikation af, at der optrådte en form for mætning af vandfasen med stigende
S/V-forhold.
Såfremt afgivelsen fra materialerne er konstant per overfladeareal uanset anvendte
S/V-forhold, ville en afbildning af flux som funktion af S/V-forhold resultere i en
vandret linie. Beregnes flux for de anvendte S/V-forhold opnås imidlertid en omvendt
proportional sammenhæng imellem flux og S/V-forhold (Figur 21 og Tabel 15), hvilket igen
indikerer at afgivelsen til vandfasen falder med stigende S/V-forhold.
Figur 19:
Gennemsnitlige vækstkurver for P17 i ekstrakter af blåt PEM(2)
materiale fremstillet med forskellige S/V-forhold og i tilhørende blindprøver.
Ekstraktionen forløb over 15 døgn ved 20° C med omrystning.
Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15° C.
Figur 20:
Afgivelse fra blåt PEM(2) materiale som funktion af anvendte
S/V-forhold (de enkelte ekstrakters AOCP17-værdi er fratrukket gennemsnittet
af blindværdierne). Ekstraktionen forløb over 15 døgn ved 20°
C med omrystning ved varierende S/V-forhold. Efter materialet var taget op, blev
ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15° C. Bemærk
logaritmisk skala og indlagte logaritmiske tendenskurve.
Figur 21:
Gennemsnitlige flux for blåt PEM(2) materiale som funktion af
anvendte S/V-forhold (blindværdier fratrukket inden beregning). Ekstraktionen forløb
over 15 døgn ved 20° C med omrystning ved varierende
S/V-forhold. Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne podet med P17 og inkuberet
ved 15° C.
Tabel 15:
Gennemsnitlige flux for blåt PEM(2) materiale. Ekstraktionen
forløb ved 20° C med omrystning ved varierende S/V-forhold og
med ekstraktionsperioder på 5 og 15 døgn. Efter materialet var taget op, blev
ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15° C.
|
Gennemsnitlig
flux
[´ 10-3 mg acetat-C/cm2/d] |
S/V-forhold [cm-1] |
15 døgns ekstraktion |
5 døgns ekstraktion |
0,07 |
8,5 |
- |
0,14 |
7,0 |
66,9 |
0,27 |
7,9 |
- |
0,41 |
3,4 |
- |
0,55 |
3,8 |
- |
0,69 |
5,6 |
9,0 |
1,38 |
2,4 |
- |
Undersøgelserne indikerede klart, at afgivelsen per overfladeareal er omvendt
proportional med det anvendte S/V-forhold. Desuden ser det ud til, at der eksisterer et
øvre S/V-forhold, hvorover der ved højere S/V-forhold ikke afgives væsentligt mere til
vandfasen ved en given ekstraktionstid.
Der er ikke nogen oplagt forklaring på de observerede sammenhænge imellem afgivelse
og S/V-forhold. En tese kunne være, at vandfasen ved et givent S/V-forhold mættes med
substrat, og man derfor ikke ville se en større afgivelse ved anvendelser af højere
S/V-forhold. Dette kunne forklare, at der ikke var forskel på afgivelserne ved
S/V-forhold på 0,5 og 1,0 cm-1 (Figur 17), og at koncentrationen i vandfasen
ikke steg ved S/V-forhold over 0,69 cm-1 i undersøgelsen af syv S/V-forhold
(Figur 20). Denne tese afvises dog af, at flux for de syv S/V-forhold viste en klar
tendens til en omvendt proportional sammenhæng imellem flux og S/V-forhold over alle de
undersøgte S/V-forhold (Figur 21) - hvis tesen havde været korrekt, ville fluxen have
været konstant indtil det S/V-forhold, der gav mætning, for derefter at aftagende med
stigende S/V-forhold. Endvidere ville der ikke være blevet registreret større afgivelser
ved 20 døgns ekstraktion end ved 9 døgns ekstraktion, såfremt den manglende forskel
imellem S/V-forhold ved 9 døgns ekstraktion kunne forklares med en mætning af vandfasen
allerede ved S/V-forhold på 0,5 cm-1 (Tabel 12). En anden tese kunne være, at
omsætningen af de afgivne stoffer frembragte toksiske metabolitter, som hæmmede videre
vækst af P17. Dette stemmer dog ikke overens med resultaterne fra 9 og 20 døgns
ekstraktion, hvor der i givet fald ikke skulle kunne måles højere P17 koncentrationer i
vandfasen i 20 døgns ekstrakterne. Det er ud fra de opnåede resultater ikke muligt at
fastlægge, hvorledes afgivelsen afhænger af S/V-forholdet, men afgivelsen vil givetvis
være en balance mellem følgende faktorer:
 | Opløselighed og polaritet af de afgivne stoffer |
 | Afgivelseshastighed, som formentlig er afhængig af en koncentrationsgradient |
 | Grænselaget ved materialeoverfladen |
Figur 22:
Flux for 15 døgns ekstraktioner af blåt PEM(2) materiale
fremstillet ved forskellige S/V-forhold afbildet som funktion af henholdsvis
overfladeareal og masse. Ekstraktionerne blev udført ved 20°
C med omrystning, og den efterfølgende vækst af P17 foregik ved 15°
C.
Ved 20 døgns ekstraktion uden omrystning af blåt PEM(1) materiale ved 10° C og et S/V-forhold på 0,5 cm-1 var der ikke
væsentlig forskel i afgivelsen mellem S/V-forhold på 0,5 og 1,0 cm-1. Ved 15
døgns ekstraktion med omrystning af blåt PEM(2) materiale ved 20° C og et S/V-forhold på 0,55 cm-1 var der forskel i
afgivelsen mellem S/V-forhold på 0,55 og 1,38 cm-1, men ikke væsentlig
forskel mellem S/V-forhold på 0,69 og 1,38 cm-1. Ved hvilket S/V-forhold,
videre afgivelse til vandfasen hæmmes, vil således være styret af
ekstraktionsforholdene.
Den uventede sammenhæng imellem S/V-forhold og afgivelse kunne måske forklares ved at
afgivelsen i højere grad er afhængig af massen af materiale end af overfladearealet. I
undersøgelsen med PEM(2) var der dog ikke bedre sammenhæng mellem flux og
masse end mellem flux og overfladeareal (Figur 22). Snitfladerne udgjorde forskellige
andele af det totale overfladeareal ved forskellige S/V-forhold (mellem 3 og 17%), men der
var ingen indikation af, at snitfladerne havde signifikant indflydelse på de opnåede
flux.
Det øgede antal kimtalsbestemmelser viste eksponentiel vækst de første 2-3 døgn.
Undersøgelserne viste desuden, at det er vigtigt at inkludere dag 3 og dag 4 efter
podning for at registrere det reelle maksimale bakterieantal. Det maksimale bakterieantal
forekommer afhængigt af både substrattype og koncentration efter forskellige
inkuberingstider, der ikke kan forudsiges,. Til eksempel blev det maksimale bakterieantal
registreret i de enkelte ekstrakter mellem dag 3 og 7 i undersøgelsen med 7 forskellige
S/V-forhold.
Mellem 9- og 20 døgns ekstrakterne var der udover forskellen i koncentrationen af P17
også forskel på vækstkurvernes forløb. I 20 døgns ekstrakterne blev det maksimale
antal bakterier opnået efter kort inkubationstid, hvorefter vækstkurverne faldt
kraftigt, mens P17 i 9 døgns ekstrakterne voksede støt gennem hele inkuberingsperioden
(Figur 17). Erfaringer på IMT viser, at dette gælder generelt for P17 som renkultur; med
højere substratkoncentrationer opnås det maksimale antal tidligere i
inkuberingsforløbet og vækstkurven falder kraftigere.
Afgivelsen fra polymere materialer til vandfasen steg indtil et givent S/V-forhold,
hvorefter der ikke blev afgivet væsentligt mere til vandfasen, selvom S/V-forholdet blev
øget. Det aktuelle S/V-forhold er givetvis ikke universelt for hverken materialer eller
testforhold. Et S/V-forhold på 0,5 cm-1 (svarende til en indre rørdiameter
på 4 cm) blev valgt ud fra de udførte forsøg, da dette S/V-forhold lå i det dynamiske
område ved 20° C og gav et respons signifikant højere end
blindværdierne. Umiddelbart havde massen af materialet eller andelen af snitfladearealet
ikke større betydning for fluxen end S/V-forholdet.
Fem polymere materialer blev undersøgt efter metoden gennemgået i afsnit 3.3:
 | Blå PEM(2) |
 | Sort PEM |
 | Lysegrå PVC med bly-stabilisatorer: PVC(Pb) |
 | Mørkegrå PVC med calcium/zink stabilisatorer: PVC(Zn/Ca) |
 | Ufarvet PVC med organiske stabilisatorer (prøvekørsel): PVC(Org.) |
De to PEM materialetyper havde indgået i de tidligere undersøgelser.
Vækstkurverne for P17 i ekstrakterne (serie 1) kunne ikke direkte omsættes til en
AOC-værdi for afgivelsen fra de enkelte materialer på samme måde som i tidligere
undersøgelser. Dels var der i nogle tilfælde store afvigelser mellem de enkelte
triplikater, og dels svarede vækstkurverne ikke til de tidligere, idet maksimale
bakterieantal generelt blev opnået senere i vækstforløbet. Desuden var P17 antallet i
en del af ekstrakterne lavere end i blindprøverne. For at undersøge om en
hæmningseffekt (f.eks. tilstedeværelsen af toksiske forbindelser) kunne forklare de
opnåede vækstkurve, blev alle ekstrakterne dag 29 podet med 100 CFU/L P17 for at påvise
tilstedeværelse af P17 (før kimtalsbestemmmelse dag 29) og tilsat 1 mL acetatopløsning
til en slutkoncentration på ca. 20 mg acetat-C/L. Såfremt der
ikke var nogen faktorer, som hæmmede væksten af P17, skulle dette resultere i en
tilvækst i AOC på omkring 20 mg acetat-C/L. Bakterieantallet
blev bestemt 3 og 5 døgn efter tilsætningen af acetat. Vækstkurver for P17 i
ekstrakterne, maksimale AOCP17-værdier samt tilvæksten som følge
acetattilsætningen ses angivet som serie 1 i Bilag E. Der var ikke entydig sammenhæng
imellem hvilke ekstrakter, der havde resulteret i lavere P17 koncentrationer end
blindprøverne og hvilke ekstrakter, der gav et lavere antal P17 end forventet som følge
af acetattilsætningen. Det var derfor ikke umiddelbart til at konkludere, om resultaterne
skyldes tilstedeværelsen af toksiske forbindelser.
Da der var flere faktorer, der viste sig anderledes end forventet i undersøgelsen af
de fem materialer, blev forsøget gentaget 3 måneder senere (serie 2) med de samme
materialer fra samme bacth som i den første undersøgelse. Materialerne havde siden
modtagelse fra producenterne været opbevaret indpakket i stanniol ved stuetemperatur.
Ekstrakterne blev dag 20 tilsat 1 mL acetatopløsning til en slutkoncentration på ca. 25 mg acetat-C/L for at undersøge tilstedeværelse af hæmmende
forbindelser. Vækstkurver for P17 i ekstrakterne, maksimale AOCP17-værdier
samt tilvæksten som følge acetattilsætningen ses angivet som serie 2 i Bilag E. Der var
samme problemer med manglende overensstemmelse imellem triplikater og imellem ekstrakter
af materialer og blindprøver som under serie 1, og der blev heller ikke set den
forventede tilvækst ved tilsætningen af acetat. De to seriers blindværdier stemte
overens, men der var ikke videre overensstemmelse imellem opnåede AOCP17-værdier
fra serie 1 og serie 2 (jævnfør Tabel 16).
De uventede lave AOCP17-værdier kunne eventuelt tilskrives faktorer
forbundet med selve materialet:
 | Afgivelse af forbindelser fra materialet, som kan virke toksiske på bakterier |
 | Variationer i sammensætningen inden for materialet ved produktion |
 | Stoffer fra materialet var "afdampet" som følge af opbevaringen |
Alle tre punkter kunne med stor sandsynlighed afvises; de første to, da de to PEM
materialer havde indgået i tidligere undersøgelser, og havde givet tilfredsstillende
resultater med hensyn til overensstemmelse imellem triplikater og med niveauer i forhold
til blindværdier; det tredje, da der ikke konsekvent var lavere AOCP17 i serie
2 end i serie1.
Der blev ikke konstateret kontamineringer med uønskede bakterier ved
kimtalsbestemmelserne på R2A-agar med en inkubationstid på 2-3 døgn ved 25° C (senere undersøgelser viste dog, at kontaminerende bakterier
først voksede frem på R2A-agar, når inkubationstiden blev forlænget til
9-14 døgn , jævnfør Bilag G).
ATP (adosine triphosphat) findes i alle levende celler og fungerer som cellernes
energilager. ATP er således et indirekte mål for bakterieantallet (jævnfør
analyseprincip og metode i Bilag F).
ATP-indholdet i prøver fra dag 0 for serie 1 og 2 blev analyseret for at afklare, om
de afvigende resultater kunne tilskrives en kontaminering med uønskede bakterier.
ATP-niveauer £ 5 pg ATP/mL er normalnivauet for en
ikke-kontamineret drikkevandsprøve podet med P17. De målte ATP-værdier ses i Tabel 16
sammen med de i ekstakterne opnået AOCP17-værdier.
Tabel 16:
AOCP17-værdier i ekstrakter af polymert materiale (blindværdi
ikke fratrukket) samt tilhørende ATP-værdier for dag 0. Ekstraktionerne blev udført ved
20° C over 15 døgn med omrystning, mens væksten af P17
foregik ved 15° C. Skraverede værdier angiver ekstrakter, der
har været kontamineret med uønsket bakterier under ekstraktionen.
Materiale |
Max.
AOCP17
[mg acetat-C/L] |
ATP -
dag 0
[pg ATP/mL] |
|
Serie 1 |
Serie 2 |
Serie 3 |
Serie 1 |
Serie 2 |
Serie 3 |
Blå PEM 1 |
36 |
3 |
64 |
£
5 |
14 |
£
5 |
Blå PEM 2 |
42 |
11 |
42 |
£
5 |
352 |
18 |
Blå PEM 3 |
67 |
12 |
41 |
£
5 |
223 |
17 |
Sort PEM 1 |
22 |
46 |
63 |
454 |
£
5 |
£
5 |
Sort PEM 2 |
7 |
43 |
56 |
129 |
£
5 |
13 |
Sort PEM 3 |
65 |
92 |
54 |
£
5 |
£
5 |
33 |
PVC(Zn/Ca) 1 |
15 |
4 |
54 |
936 |
84 |
£
5 |
PVC(Zn/Ca) 2 |
3 |
1 |
47 |
336 |
24 |
£
5 |
PVC(Zn/Ca) 3 |
5 |
3 |
49 |
321 |
137 |
£
5 |
PVC(Pb) 1 |
7 |
39 |
11 |
85 |
£
5 |
33 |
PVC(Pb) 2 |
1 |
39 |
46 |
817 |
£
5 |
£
5 |
PVC(Pb) 3 |
0 |
15 |
52 |
74 |
17 |
£
5 |
PVC(Org.) 1 |
48 |
13 |
60 |
£
5 |
26 |
£
5 |
PVC(Org.) 2 |
49 |
4 |
58 |
£
5 |
98 |
£
5 |
PVC(Org.) 3 |
39 |
40 |
52 |
£
5 |
£
5 |
£
5 |
Blind 1 |
9 |
10 |
28 |
£
5 |
£
5 |
£
5 |
Blind 2 |
13 |
14 |
24 |
£
5 |
£
5 |
£
5 |
Blind 3 |
7 |
8 |
21 |
£
5 |
£
5 |
£
5 |
De forhøjede ATP-værdier for nogle af ekstrakterne viste, at de havde været
kontamineret med uønskede bakterier under ekstraktionen, og det var konsekvent disse
ekstrakter, hvor AOCP17-værdi var lavere end forventet. Dette kan forklares
ved, at de kontaminerende bakterier havde opbrugt det tilgængelige substrat, eventuelt
allerede under ekstraktionen, så P17 ikke kunne vokse i ekstraktet. Da de kontaminerende
bakterier voksede langsommere end P17 på agarpladerne gav de kontaminerende bakterier
ingen synlige kolonier ved kort tids inkubering af agarpladerne. ATP-målingen kunne
derimod påvise bakteriernes tilstedeværelse.
Ingen af blindprøverne var kontamineret, hvilket kunne tyde på at problemet med
overlevelse af uønskede bakterier var forbundet med tilstedeværelsen af materialet. Da
tidligere undersøgelser havde været udført med samme batch PEM materialer (hvor der
ikke havde været kontamineringer), måtte problemet med overlevelse af uønskede
bakterier kunne tilskrives en ændring i det leverede vand - enten selve testvandet eller
det postevand, der anvendes til skylning af testmaterialet inden ekstraktionen. Da
uønskede bakterier også havde overlevet under undersøgelsen med sekventielle
ekstraktioner (jævnfør Kapitel 6), men blev inaktiveret ved at hæve
pasteuriseringstiden, blev effekten af forskellige pasteuriseringsforhold og kloring på
de uønskede bakterier undersøgt (Bilag G). De pågældende bakterier kunne inaktiveres
ved pasteurisering (70° C, 30 min) i vand uden materiale, men
kunne overleve, når de blev pasteuriseret i vand med materiale tilstede. Denne
observation bekræftede den generelle opfattelse af, at bakterier er mere
modstandsdygtige, når de er fasthæftede. Ud fra den udførte undersøgelse blev det
besluttet at gentage undersøgelsen af de fem materialer, idet pasteuriseringen blev
ændret til 70° C i 30 min. AOCP17-værdier i
ekstrakterne samt ATP-værdier for dag 0 ses i Tabel 16.
Figur 23:
Vækstkurver for P17 i ekstrakter af 5 forskellige polymere materialer og
tilhørende blindprøver afbilledet dels som AOC og dels som ATP (kontaminerede prøver
sorteret fra). Ekstraktionerne blev udført ved 20° C over 15
døgn med omrystning, mens væksten af P17 foregik ved 15° C.
På trods af ændringen af pasteuriseringen var der i serie 3 fortsat problemer med
kontaminering med uønskede bakterier under ekstraktionen. Dog var det en langt mindre del
af de uønskede bakterier, der havde kunnet klare den kraftigere pasteurisering, da
ATP-værdierne var langt lavere i de kontaminerede ekstrakter i serie 3 end i de to
forgående serier. Desuden blev ATP målt i de ikke-kontaminerede ekstrakter fra serie 3
for alle dage hvor der blev bestemt kimtal. Vækstkurver for P17 er afbilledet dels som
AOC og dels som ATP i Figur 23 (ATP-data er angivet i Bilag E). Både målt som CFU og AOC
var der markant højere AOCP17 i alle ekstakterne end i blindprøverne. Den
gode overensstemmelse imellem de sammenhørende kurver for AOC og ATP indikerer, at
ATP-målinger måske vil kunne erstatte kimtalsbestemmelser.
Tabel 17:
AOCP17-værdier opnået i ekstakter af fem polymere materialer
(fratrukket respektive gennemsnitlige blindværdier). Gennemsnit er angivet som
aritmetiske gennemsnit med standardafvigelser. Ekstraktionerne blev udført ved 20° C over 15 døgn med omrystning, mens væksten af P17 foregik ved
15° C. Værdier i parenteser indgår ikke i beregning af snit.
Materiale |
Serie |
AOCP17
[mg acetat-C /L] |
Gennemsnit
[mg acetat-C /L] |
Flux
[´ 10-3 mg acetat-C/d/cm2] |
Blå PEM |
1
1
1
3 |
26
32
(58)
41 |
33 ±
6 |
4,4 ±
0,8 |
Sort PEM |
1
2
2
2
3 |
56
35
33
(82)
40 |
41 ±
9 |
5 ±
1 |
PVC
(Zn/Ca) |
3
3
3 |
30
23
25 |
26 ±
3 |
3,5 ±
0,4 |
PVC(Pb) |
2
2
3
3 |
28
29
22
28 |
27 ±
3 |
3,6 ±
0,4 |
PVC(Org.) |
1
1
1
2
3
3
3 |
38
39
30
30
36
34
28 |
34 ±
4 |
4,5 ±
0,4 |
Ud fra AOCP17-værdierne fra ikke-kontamineret ekstrakter fra de tre serier,
blev bestemt et gennemsnit for afgivelsen fra de fem materialer på trods af, at der ikke
var triplikate værdier for alle materialer fra én serie (Tabel 17). AOCP17-værdier
for de enkelte ekstrakter blev fratrukket den gennemsnitlige blindværdi for de respektive
serier inden beregning. To AOCP17-værdier for henholdsvis blå og sort PEM var
afvigende høje (markeret med parentes i Tabel 17). Disse værdier indikerede en
forurening med eksternt kulstof (Kap. 3.3.2), og indgik derfor ikke i beregningen af
gennemsnit. Da de enkelte ekstrakter stammede fra forskellige serier (med forskellige
blindværdier) kunne en gennemsnitlige AOCP17-værdi ikke bestemmes som
beskrevet i Kapitel 3, og i stedet blev det aritmetiske gennemsnit bestemt. Der var en
tendens til at der blev opnået højere værdier i ekstrakter af PEM og PVC(org.) end i
metalstabiliseret PVC, men på grund af variationen mellem ekstrakterne var disse
forskelle ikke signifikante. Der blev målt afgivelser på mellem 27 og 41 mg acetat-C/L svarende til en flux på 3,5-5,5´
10-3 mg acetat-C/d/cm2.
Værdierne for de to PEM materialer svarer til, hvad der blev set ved tidligere
undersøgelser: Fra undersøgelsen af syv S/V-forhold blev der for blå PEM(2)
under tilsvarende testforhold ved et S/V-forhold på 0,55 cm-1 opnået en
værdi for afgivelsen på 31 mg acetat-C/L; for sort PEM blev
der ved undersøgelsen af sekventielle ekstraktioner (ekstraktion ved 10° C) opnået 34 mg acetat-C/L i det
første ekstrakt på trods af kontaminering med en uønsket bakteriestamme.
Ved AOC-metoden fastsættes AOC-værdien ud fra en vækstkurves maksimale værdi. På
denne måde vil prøver med vidt forskellige vækstkurveforløb (som skitseret på Figur
24) få tillagt den samme AOC-værdi, blot der er opnået samme maksimale bakterieantal.
Der er i projektet (og i forbindelse med andre forsøg udført på IMT) observeret en
generel tendens til, at jo højere substratkoncentrationer er, desto tidligere i
inkubationsforløbet opnås den maksimale bakteriekoncentration, og desto hurtigere falder
vækstkurven igen. Forskelle i vækstkurveforløb kan desuden skyldes, at forskellige
substrater ikke er lige biotilgængelige for bakterierne, og således vil blive omsat med
forskellig hastighed. Der går således information tabt ved ikke at benytte det fulde
vækstkurveforløb til fastlæggelse af AOC-værdien. Inddrages hele vækstkurveforløbet
(inklusiv decay) vil der formentlig også kunne siges noget om substraternes
tilgængelighed, og en mere korrekt AOC-værdi fastlægges. En bedre bestemmelse af
AOC-værdien kunne således tænkes opnået, hvis denne fastsættes ud fra en modellering
over alle punkter på vækstkurven.
Figur 24:
Skitsering af to forskellige mulige vækstkurveforløb ved udførelse af en
AOC-bestemmelse.
En typisk vækstkurve for et batchforsøg kan opdeles i tre faser, nemlig lag-, vækst-
og henfaldsfasen. I lagfasen er den bakterielle vækst endnu ikke startet, fordi
bakterierne endnu ikke har dannet de nødvendige enzymer. I vækstfasen vokser bakterierne
eksponentielt indtil væksten begrænses af en faldende substratkoncentration. Når
substratet er opbrugt, begynder bakterierne at dø eller gå over i en hvilefase, hvor de
ikke umiddelbart kan vokse på traditionelle medier, dvs. antallet reduceres, hvilket
kendetegner henfaldsfasen. Lagfasen for en renkultur varer sjældent mere end nogle få
timer, hvilket betyder, at den kan negligeres i forhold til det samlede vækstforløb.
Ved den traditionelle AOC-bestemmelse fastlægges hele vækstforløbet ved løbende
kimtalsbestemmelser, men det er kun den maksimale bakteriekoncentration i vækstforløbet,
der anvendes til beregning af AOC-værdien. Det kan være svært at opnå en sikker
bestemmelse af AOC-værdien, fordi kimtalsbestemmelser generelt er behæftet med
væsentlig måleusikkerhed. En modellering over hele datasættet kan reducere usikkerheden
i AOC-bestemmelsen, da den enkelte måling indgår med mindre vægt.
Ved modelleringen anvendes den basisviden, der er knyttet til bakteriel vækstkinetik.
Således kan tilvæksten af bakterier modelleres som en dynamisk proces, hvor væksten
beskrives med et simpelt Monod udtryk, kombineret med henfald. Henfaldet kan antages at
være proportionalt med antallet af bakterier. Den samlede ligning for tilvæksten af
bakterier bliver således:
Hvor X er bakteriekoncentrationen, C er substratkoncentrationen, t er tiden, m max er observeret maksimal væksthastighed, Ks
er halvmætningskonstant og khenfald er henfaldskonstant.
Fjernelsen af substrat fra vandfasen kan så beskrives som:
Hvor Y er udbyttekonstanten, der i dette tilfælde er bestemt ved P17s vækst på
acetat.
Modellen blev opstillet i programmet AquaSim version 2.0 /Reichart, 1995/. For prøver
(vækstkurver) blev startkoncentrationen af substrat estimeret af modellen, mens
startbiomassen for den respektive serie blev bestemt som et gennemsnit af de målte kimtal
umiddelbart efter podningen. Væksthastighed (m max),
halvmætningskonstant (Ks) og henfaldskonstant (khenfald) blev ved
hjælp af modellen bestemt som globale parametre, dvs. fælles for alle vækstforløbene.
Datasættene fra undersøgelsen af forskellige S/V-forhold og udvalgte materialer var
umiddelbart mest velegnede som grundlag for modelleringen, da begge undersøgelser
omfattede et stort antal sammenhørende prøver. 20 vækstkurver fra S/V-undersøgelsen
(Kapitel 7) og 29 ikke-kontaminerede vækstkurver fra undersøgelsen af fem polymere
materialer (Kapitel 8) blev indlæst og anvendt til parameterestimation.
Generelt syntes modellen at give en god beskrivelse af de målte data. To eksempler på
modellering af vækstkurver er vist i Figur 25.
Figur 25:
Eksempel på modellering af vækstkurver med data fra Kapitel 7.
Resultatet af parameterestimationen for S/V-undersøgelsen er angivet i Tabel 18 sammen
med værdierne fra den almindelige AOC. Tilsvarende blev AOC-værdierne fra undersøgelsen
af udvalgte materialer estimeret (Tabel 19).
Fra modellerne kan der, udover AOC-værdien, yderligere uddrages information
vedrørende bakteriernes vækstkinetik. Således kan væksthastighed,
halvmætningskonstant og henfaldskonstant bestemmes direkte udfra modellen (Tabel 20).
Især væksthastighed og halvmætningskonstant kan have interesse i forhold til en
vurdering af nedbrydeligheden af de fra plastmaterialerne afgivne stoffer.
Tabel 18:
AOCP17-værdier bestemt ved parameterestimation i AOC-model sammenholdt med
værdier fra den almindelige beregning. Data fra undersøgelse af forskellige S/V-forhold.
- : Ekstrakter der ikke blevet taget med i beregninger (Bilag H); i.m.: ikke
modelleret.
S/V-forhold |
Aflæst |
Model |
S/V-forhold |
Aflæst |
Model |
[cm-1] |
[ug
acetat-C/L] |
[cm-1] |
[ug
acetat-C/L] |
0,07 #1 |
28 |
27 |
0,55 #1 |
54 |
53 |
0,07 #2 |
30 |
30 |
0,55 #2 |
52 |
52 |
0,07 #3 |
- |
i.m. |
0,55 #3 |
53 |
50 |
|
|
|
|
|
|
0,14 #1 |
37 |
37 |
0,69 #1 |
79 |
75 |
0,14 #2 |
36 |
35 |
0,69 #2 |
78 |
68 |
0,14 #3 |
40 |
35 |
0,69 #3 |
- |
i.m. |
|
|
|
|
|
|
0,27 #1 |
59 |
51 |
1,38 #1 |
75 |
74 |
0,27 #2 |
49 |
45 |
1,38 #2 |
77 |
75 |
0,27 #3 |
52 |
46 |
1,38 #3 |
67 |
63 |
|
|
|
|
|
|
0,41 #1 |
37 |
34 |
Blind #1 |
21 |
22 |
0,41 #2 |
45 |
47 |
Blind #2 |
21 |
18 |
0,41 #3 |
46 |
44 |
Blind #3 |
- |
i.m. |
Tabel 19:
AOCP17-værdier bestemt ved parameterestimation i AOC-model sammenholdt med
værdier fra den almindelige beregning. Data fra undersøgelse af udvalgte materialer. - :
Ekstrakter der ikke blevet taget med i beregninger (Bilag H); i.m.: ikke modelleret.
|
Serie
1 |
Serie
2 |
Serie
3 |
Materiale |
Aflæst |
Model |
Aflæst |
Model |
Aflæst |
Model |
Blå PEM(2)
#1 |
36 |
32 |
- |
i.m. |
64 |
60 |
Blå PEM(2)
#2 |
42 |
36 |
- |
i.m. |
42 |
35 |
Blå PEM(2)
#3 |
67 |
62 |
- |
i.m. |
41 |
36 |
Sort PEM #1 |
- |
i.m. |
46 |
36 |
63 |
62 |
Sort PEM #2 |
- |
i.m. |
43 |
35 |
- |
i.m. |
Sort PEM #3 |
65 |
60 |
92 |
76 |
- |
i.m. |
PVC(Zn/Ca)
#1 |
- |
i.m. |
- |
i.m. |
54 |
47 |
PVC(Zn/Ca)
#2 |
- |
i.m. |
- |
i.m. |
- |
i.m. |
PVC(Zn/Ca)
#3 |
- |
i.m. |
- |
i.m. |
- |
i.m. |
PVC(Pb) #1 |
- |
i.m. |
39 |
32 |
- |
i.m. |
PVC(Pb) #2 |
- |
i.m. |
39 |
35 |
46 |
42 |
PVC(Pb) #3 |
- |
i.m. |
- |
i.m. |
52 |
48 |
PVC(Org.)
#1 |
48 |
43 |
- |
i.m. |
- |
i.m. |
PVC(Org.)
#2 |
49 |
46 |
- |
i.m. |
- |
i.m. |
PVC(Org.) #3 |
39 |
37 |
40 |
39 |
- |
i.m. |
Blind #1 |
9 |
8 |
10 |
11 |
28 |
23 |
Blind #2 |
13 |
13 |
14 |
14 |
24 |
23 |
Blind #3 |
7 |
7 |
8 |
9 |
21 |
18 |
Tabel 20:
Globale parametre bestemt ved parameterestimation i AOC-model.
Undersøgelse |
m max
[d-1] |
KS
[m g acetat-C/L] |
khenfald
[d-1] |
S/V-forhold
Udvalgte materialer |
3,4 ±
0,2
5,1 ± 0,4 |
17 ±
3
41 ± 8 |
0,0049 ±
0,0007
0,0028 ± 0,0027 |
På trods af det næringsfattige miljø voksede bakterierne i forsøget med overraskende
høj hastighed. Bakteriernes estimerede væksthastighed var sammenlignelige med værdier
observeret i aktiv slam anlæg, derimod var halvmætningskonstant og henfaldskonstant
væsentligt lavere /Henze et al. 1997/.
I Monod-modellen er halvmætningskonstanten og væksthastigheden stærkt korrelerede,
hvorfor der stilles store krav til datamaterialet. Anvendelsen af væksthastighed og
halvmætningskonstant som globale parametre forudsætter, at substratomsætningen er ens i
de målte vækstforløb, hvilket i teorien kun er tilfældet, hvis der er tale om det
samme stof. Generelt bør de globale parametre kun anvendes for nært beslægtede stoffer,
hvilket imidlertid kan være vanskeligt at opnå i praksis. De globale variable kan derfor
ikke opfattes som et udtryk for P17s generelle vækstkinetik, men er kun gældende for det
specielle tilfælde. Mere generelle udtryk for de globale parametre kræver, at forsøgene
udføres med den samme type substrat ved forskellige koncentrationer, som i tilfældet med
undersøgelse af forskellige S/V-forhold eller ved fremstilling af AOC-standardkurver på
kendte kulstofkilder.
Af modelleringen fremgik det tydeligt at kurvetilpasningen til datasættet fra
S/V-forholdsundersøgelsen var væsentligt bedre end undersøgelsen med udvalgte
materialer. Dette blev til dels afspejlet af at værdien for halvmætningskonstanten i
undersøgelsen af udvalgte materialer var høj i forhold til de undersøgte
AOC-koncentrationer (1. ordens vækst), hvilket antyder at Monod modellen var ikke var
velegnet til beskrivelse af vækstforløbene.
Sammenlignes de to beregningsmetoder ses en afvigelse på ca. 7%, idet modelleringen
giver systematisk lavere AOC-værdier (Figur 26). Afvigelsen afspejler til dels, at man
ved at benytte ekstremværdier i den almindelige beregning af AOC begår en systematisk
regnefejl. En målefejl, der giver et større tal vil blive vægtet højere i forhold til
en målefejl, der giver et mindre tal. Således opstår den paradoksale situation, at jo
flere målinger man foretager, jo større er sandsynligheden for en høj AOC-værdi.
Figur 26:
Sammenligning mellem beregningsmetoder for AOC-værdier.
Målefrekvensen bør generelt tilpasses den type af information, der skal uddrages af
kurveforløbene. Ønskes f.eks. en god bestemmelse af bakteriernes vækstkinetik, er det
vigtig at fokusere prøvetagningen omkring den indledende vækstfase. Desuden bør der så
vidt muligt udføres forsøg med forskellige startkoncentrationer af substrat.
Samlet set vil en modellering mindske betydningen af usikkerheden på et enkelt punkt
og den vil desuden kunne give oplysninger om væksthastigheden og dermed tilgængeligheden
af substratet. Dette giver mulighed for at foretage en objektiv analyse af data fra
AOC-bestemmelsen For at kunne anvende en modellering til fastlæggelse af AOC-værdier er
det dog nødvendigt i langt større omfang at undersøge modelparametrenes afhængighed af
substratkoncentration og substrattype.
Igennem de indledende undersøgelser til udviklingen af en metode blev det valgt at
fastlægge polymere materialers eftervækstpotentiale ved en to-trins-procedure:
- Steril ekstraktion af materialet
- AOC-bestemmelse på det færdige ekstrakt
Valget af en steril ekstraktion af materialerne giver mulighed for at teste
materialerne under forhold, der ikke ville tillade vækst af testbakterien. Samtidig giver
det mulighed for direkte sammenligning af AOC-værdier imellem ekstrakter, da
AOC-bestemmelsen altid ved være udført på samme vis, uafhængig af ekstraktionsforhold.
Materialet blev ekstraheret ved nedsænkning i testvandet frem for opfyldning af
rørlængder, da dette gav mulighed for at undersøge andre komponenter end rør, såsom
fittings, der kan have stor betydning i f.eks. vandhaner. Der er dog to primære ulemper
ved at ekstrahere materialerne på denne måde: Der kan kun undersøges komponenter, der
er ens på inder- og yderside, og materialet skal udskæres, hvilket medfører at både
naturlige overflader og snitflader er i kontakt med vandfasen. Snitfladerne har ikke
umiddelbart betydning for afgivelsen, men det er en faktor, der kan give anledning til
variation, da den procentdel snitflader udgør af det totale overfladeareal afhænger af
det anvendte rørs dimensioner (Tabel 21). Det bør dog så vidt muligt tilstræbes, at
snitfladerne udgøre så lille en procentdel af overfladearealet som muligt, da
snitfladerne alt andet lige altid vil fremstå mere ru end de naturlige overflader.
Snitflader kan undgås ved at ekstrahere rørmaterialer ved opfyldning af rørlængder,
der samtidig vil give mulighed for at undersøge rør, som ikke er ens på inder- og
ydreside. En sådan ekstraktionsform vil dog i praksis være problematisk at udføre
sterilt. Et mål for eftervækstpotentialet for rør med forskellige inder- og yderside
vil kunne fastlægges ved den valgte metode ved en undersøgelse af rør fremstillet af
indersidematerialet.
Tabel 21:
Procentdel snitflader udgør af totale overfladeareal ved et S/V-forhold på
0,5 cm-1 for de i projektet undersøgte fem polymere rørmaterialer.
|
Diameter |
% snitflader ved |
Materiale |
Ydre |
Indre |
S/V = 0,5 cm-1 |
Blå PEM(1)
Blå PEM(2)
Sort PEM
PVC(Pb)
PVC(Org.)
PVC(Zn/Ca) |
32
20
20
90
110
110 |
29
16
16
81,4
101
99 |
7
5
5
17
23
19 |
Den væsentligste svaghed ved kombinationen af ekstraktion og AOC-bestemmelse er
nødvendigheden af, at ekstraktionen forløber sterilt. I dette projekt har der været en
del problemer med at inaktivere testvandets og/eller postevandets naturlige
bakteriepopulation. Grunden til at problemerne først opstod undervejs i projektets
arbejdet kan formentlig tilskrives ændringer i råvandet, da Lyngby vandværk pumper fra
skiftende boringer. I dette projekt kunne problemet med overlevelse af uønskede bakterier
formentligt være løst ved at skifte vandtype, hvilket dog ville have medført praktiske
besværligheder. Undervejs i arbejdet blev der i nogle tilfælde oplevet relativt høje
blindværdier (ekstraktionen af blå PEM(2) i S/V-undersøgelsen, Kapitel 7 og
serie 3 i undersøgelsen af fem polymere materialer, Kapitel 8), hvilket formentlig også
kan tilskrives variationer i driften (testvandet kan f.eks. være udtaget lige efter et
returskyl). De relativt høje blindværdier har dog ikke haft indflydelse på afgivelsen
fra materialerne, hvilket kan ses ved de sammenlignelige værdier fra ikke-kontaminerede
ekstrakter mellem serie 1, 2 og 3 i undersøgelsen af fem polymere materialer (jævnfør
Tabel 17 i Kapitel 8).
Ved at undersøge afgivelsen fra et polymert materiale, er der tre primære
kvalitetskriterier, der skal overvejes ved kvalitetsvurdering af et ekstrakt:
 | Har ekstraktet været kontamineret med uønskede bakterier under ekstraktionen
(pasteurisering ikke tilstrækkelig effektiv) |
 | Er ekstraktet blevet kontamineret med uønskede bakterier under kimtalsbestemmelserne |
 | Er ekstraktet blevet kontamineret med eksternt organisk kulstof |
I undersøgelsen af fem polymere materialer (Kapitel 8) blev ATP-måling anvendt til at
afgøre, om ekstrakterne havde været kontamineret under ekstraktionen. ATP-måling vil
således kunne anvendes som kvalitetsparameter til kontrol af, om ekstraktet er sterilt
inden podningen med P17 dag 0. ATP-målinger i forbindelse med kimtalsbestemmelser gav i
undersøgelsen af fem polymere materialer (serie 3) en god overensstemmelse imellem
vækstkurver udtrykt ved AOC og ATP (jævnfør Figur 23). Optegnes ATP som funktion af CFU
P17 (for de ikke-kontaminerede ekstrakter fra serie 3), ses en klar tendens til en lineær
sammenhæng, der angiver den enkelte P17-bakteries ATP-indhold til 0,0002 pg ATP/CFU (R2=0,85).
ATP-målinger vil således også kunne anvendes som kontrol under selve AOC-bestemmelsen,
ved at sammenligne CFU P17-værdier med sammenhørende ATP-værdier. Hvis ATP-værdien er
højere end det forventede niveau, er ekstraktet kontamineret med uønskede bakterier, som
ikke detekteres ved kimtalsbestemmelserne på R2A-agar. Hvis et enkelt ekstrakt
afviger med for høj AOC-værdi i forhold til de øvrige replikater, må det antages, at
det pågældende ekstraktet er blevet kontamineret med organisk kulstof, som ikke kan
tilskrives materialet.
Figur 27:
ATP som funktion af CFU P17 baseret på data fra ikke-kontamineret ekstrakter
af fem polymere materialer og tilhørende blindprøver fra serie 3. Ekstraktionerne blev
udført ved 20° C over 15 døgn med omrystning, mens væksten
af P17 foregik ved 15° C.
ATP-målinger vil eventuelt helt kunne erstatte kimtalsbestemmelser ved bestemmelse af
afgivelse fra polymere materialer, hvorved stort set vilkårlige bakteriestammer
(renkulturer) eller en naturlig population (blandingskulturer) kunne anvendes som
standard. Ved undersøgelsen af ekstraktionsmetoder (Kapitel 4) og undersøgelsen af
desinfektion (Kapitel 5) blev der anvendt en naturlig bakteriepopulation, som ved
kimtalsbestemmelserne gav langt mindre forskel på ekstrakter og blindprøver end ved
anvendelse af P17. Dette kan formentlig tilskrives, at en meget lille andel af bakterierne
kunne vokse på R2A-agar eller ved de anvendte inkubationsforhold. Ved måling
af ATP vil der ved anvendelse af en naturlig population formodentlig være langt større
forskel på ekstrakter og blindprøver, da alle bakterier vil blive registreret. Et
problem ved at anvende ATP som parameter vil dog være, at cellerne kan mobilisere deres
ATP-indhold som reaktion på ændringer i vækstforhold og vækststadie /Atlas et al.,
1993/. Svært-nedbrydelige stoffer kunne således resultere i et andet ATP-indhold i
cellen, end hvis denne udsættes for let-nedbrydelige stoffer.
Ud fra de udførte undersøgelser blev der ikke fundet en simpel lineær sammenhæng
imellem afgivelsen udtrykt som AOCP17-værdi og S/V-forhold (jævnfør Tabel
22). Der var en tendens til øget AOCP17-værdi i vandfasen jo større
mængde materiale, der blev ekstraheret, indtil et vist S/V-forhold, hvorover der ikke
blev afgivet væsentlig mere til vandfasen. Ved hvilket S/V-forhold denne hændelse
indtræder er formentlig en kombination af materiale, ekstraktionstemperatur og af, om der
er omrystning under ekstraktionen. Fluxen viste en tendens til omvendt proportionalitet
imellem afgivelsen og S/V-forhold, hvilket ligeledes indikerer, en begrænsning af
afgivelsen fra materialet med stigende S/V-forhold. Mekanismen omkring afgivelsen er
stadig uklar, da forlænget ekstraktionstid og omrystning gav øget afgivelse ved
S/V-forhold, hvor der ikke var forskel i afgivelsen som følge af S/V-forhold. Da en
observeret afgivelse ikke direkte kan skaleres med S/V-forhold, kompliceres tolkningen af
testresultater.
Tabel 22:
Testforhold og opnåede afgivelser (fratrukket blindværdi) for de udførte
undersøgelser med P17. *Ekstrakter var kontamineret med uønskede bakterier (benævnt
NN).
Materiale |
Temp. |
Omryst-
ning |
Ekstrak-
tionstid |
S/V- forhold |
AOCP17 |
Flux |
|
[° C] |
|
[døgn] |
[cm-1] |
[mg
acetat-C/L] |
[´ 10-3
mg acetat-
C/d/cm2] |
PEM(1) |
10 |
Uden |
9
20 |
0,5
1,0
0,5
1,0 |
24
29
56
50 |
5,2
3,2
5,6
2,5 |
Sort PEM |
10 |
Uden
Med |
15
15 |
0,5
1,0
0,5
1,0 |
29*
30*
35*
45* |
3,8*
2,0*
4,7*
3,0* |
Blå PEM(2) |
20 |
Med |
5
15 |
0,14
0,69
0,07
0,14
0,27
0,41
0,55
0,69
1,38 |
23
31
8
14
29
20
31
57
50 |
66,9
9,0
8,5
7,0
7,9
3,4
3,8
5,6
2,4 |
Blå PEM(2) |
20 |
Med |
15 |
0,5 |
33 |
4,4 |
Sort PEM |
20 |
Med |
15 |
0,5 |
41 |
5,5 |
PVC(Zn/Ca) |
20 |
Med |
15 |
0,5 |
26 |
3,5 |
PVC(Pb) |
20 |
Med |
15 |
0,5 |
27 |
3,6 |
PVC(Org.) |
20 |
Med |
15 |
0,5 |
34 |
4,5 |
I Tabel 22 er resultater fra de udførte undersøgelser med P17
opsummeret. I alle undersøgelserne blev der opnået en signifikant afgivelse fra alle de
undersøgte materialer. Med S/V-forhold i intervallet 0,07-1,38 cm-1 lå AOCP17-afgivelserne
for de undersøgte materialer i intervallet 8-57 mg acetat-C/L.
Disse værdier skal vurderes ud fra, at der har været anvendt betydeligt længere
opholdstider under ekstraktionen af materialerne, end der normalt vil forekomme i
distributionssystemet, og at ekstraktionerne er foretaget i stillestående vand (i nogle
tilfælde med lettere omrystning) i modsætning til et (sædvanligvis) kontinuert, om end
varierende over døgnet, flow i distributionssystemet. Ligeledes er ekstraktionerne
udført sterilt, hvorved der ikke er har været kontakt mellem bakterier og materialer
(ingen biofilmdannelse på materialeoverfladerne). I et distributionssystem vil den
primære del af biomassen findes som biofilm på rørindersiderne. Det kan ikke afvises,
at bakterier i en sådan biofilm vil kunne trække substrat ud af
materialerne, og at en sådan aktiv afgivelse vil have større betydning end den passive
afgivelse i de udførte ekstraktionstest. Ligeledes vil bakterier i en biofilm blive udsat
for en langt stejlere koncentrationsgradient end bakterierne i vandfasen.
Med disse forbehold i mente, kan der ud fra data i Tabel 22 (der ses
bort fra 5 døgns ekstraktionerne) opstilles en simplificeret vurdering af, om bidraget
fra polymere materialerne vil have betydning ude i distributionsnettet. For at forenkle
beregningerne benyttes antagelsen, at afgivelsen foregår kontinuert over tid.
Distributionsnettet kan efter indre rørdiameter opdeles i hovedledninger 305-1200 mm,
forsyningsledninger 50-292 mm /Københavns vand, 1998/ og i stikledninger samt
husinstallationer, der går ned til 7 mm. S/V-forholdene er i hovedledningerne 0,03-0,13
cm-1, i forsyningsledningerne 0,14-0,80 cm-1 og i
stikledninger/husinstallationer 0,80-5,7 cm-1 (opsummeret i Tabel 23).
Sædvanligvis vil opholdstiden i byinstallationer ikke overskride et par dage, mens der
ved lange forsyningsledninger til landområder kan være opholdstider op til 2 uger.
Tabel 23:
Generelle S/V-forhold i distributionssystemet.
Rørtype |
Diameter
[mm] |
S/V-forhold
[cm-1] |
Hovedledninger
Forsyningsledninger
Stikledninger/husinstallationer |
305-1200
50-292
7-50 |
0,03-0,13
0,14-0,80
0,80-5,7 |
Derved vil bidraget fra polymere materialer i hovedledningerne kun bidrage med under 1 mg acetat-C/L/d til vandfasen. I forsyningsledningerne vil
AOC-bidraget til vandfasen være i en størrelsesorden af 1-3 mg
acetat-C/L/d, mens det tilsvarende bidrag i stikledninger/husinstallationer vil være i en
størrelsesorden af 3 mg acetat-C/L/d. Disse værdier skal
sammenholdes med generelle AOC-niveauer i dansk drikkevand.
I en undersøgelse, der bl.a. omfattede bestemmelse af AOC-niveauer i dansk drikkevand,
blev der for 10 danske vandværker fundet værdierne angivet i Tabel 24. Det
færdigbehandlede vands AOC-værdier var grupperet med værdier dels under 10 mg acetat-C/L, og dels i et interval imellem 20 og 40 mg acetat-C/L. Sammenholdt med de anslåede niveauerne fra
ovenstående afsnit vil afgivelser fra rørmaterialerne have mindre betydning i
forbindelse med vand fra den sidste kategori, og vil ved normal drift hellere ikke give
direkte anledning til problemer i vand fra den første kategori. Ved lange
forsyningsledninger med opholdstider på f.eks. 4 døgn, vil der dog være risiko for, at
vandets AOC-indhold kan fordobles under vejen til forbrugeren:
Ligeledes vil vand, der får lov at henstå i husinstallationerne f.eks. hen over en
weekend kunne opnå et betydeligt AOCP17-bidrag:
6-8 mg acetat-C/L svarer til 2,5-3,3*104
CFUP17/mL. Til sammenligning indeholder frisktproduceret vand fra Lyngby vandværk i
størrelsesordnen 200 CFU/mL bestemt som kimtal på R2A-agar.
Ved lange forsyningsledninger kan vandets naturlige indhold af AOC være forbrugt
undervejs til forbrugeren, og et AOC-bidrag fra rørmaterialet i husinstallationen vil
således få en langt større betydning for vandkvaliteten.
Tabel 24:
AOC-indhold i færdigbehandlet drikkevand fra 10 danske vandværker
/Jørgensen et al., 2000/.
Vandværk |
AOC
[mg acetat-C/L] |
95%
konfidensinterval |
Islevbro
Thorsbro
Haraldsbro
Slangerup
Tisvilde
Sjælsø
Ullerup
Kisserup
Rørvig |
3,7
4
4
5
5,0
6
20
27
39 |
± 0,8
± 2
± 1
± 2
± 0,2
± 2
± 6
± 5
± 9 |
Ekstraktion af polymere materialer uden tilstedeværelse af aktive bakterier viste sig
at være en egnet ekstraktionsmetode, som giver mulighed for at vælge
ekstraktionsforholdene uden hensyntagen til bakteriers vækstforhold (høje temperaturer,
variation i pH, høje klorkoncentrationer). Ekstraktionsmetoden muliggør desuden, at der
også kan udføres f.eks. GC-MS eller toksikologiske undersøgelser af ekstraktet. For at
kunne ekstrahere uden aktive bakterier blev materialet desinficeret inden ekstraktionen. I
det eksperimentelle arbejde blev der afprøvet to desinfektionsmetoder; pasteurisering og
kloring. Der blev ikke set nogen forskel i afgivelsen fra materialerne som følge af
desinfektionsmetode, og data gav ikke indikation af, at materialerne blev påvirket af
desinfektionen.
Ved den valgte metode kan det dog være vanskeligt at sikre sterile forhold og der er
en risiko for kontaminering af ekstrakterne organisk kulstof. Uønskede bakterier kan
overleve pasteuriseringen og ekstrakterne kan bliver kontamineret med uønskede bakterier
i forbindelse med optagningen af teststykker og efterfølgende podning. Ikke alle de
uønskede bakterier detekteres ved kimtalsbestemmelserne i forbindelse med
AOC-bestemmelsen. Dette skyldes dels, at pladernes inkubationstid er for kort til, at
disse bakterierne når at danne synlige kolonier, og dels at disse bakterier ikke kan
danne kolonier på R2A-agar. Undersøgelser viste, at måling af ATP i
forbindelse med kimtalsbestemmelserne er en velegnet metode til at afgøre, om et ekstrakt
er blevet kontamineret med uønskede bakterier under ekstraktionen. ATP-målinger vil
eventuelt helt kunne erstatte kimtalsbestemmelser ved bestemmelse af afgivelsen fra et
polymert materialer, men vil under alle omstændigheder være et godt supplement som
kvalitetssikring.
Anvendelse af renkulturer til måling på ekstraktet er at foretrække frem for en
naturlig bakteriepopulation ud fra et standardiseringssynspunkt. De udførte
undersøgelser viste desuden, at der ved kimtalsbestemmelser på R2A-agar var
mindre forskel imellem prøver og blindprøver ved anvendelse af en naturlig
bakteriepopulation end ved anvendelse af de anvendte renkulturer (P17 og NOX).
De indledende undersøgelser med P17 og NOX viste, at de stoffer, der afgives fra de
undersøgte materialer, kun har indflydelse på antallet af P17. NOX giver således blot
anledning til kolonier, der mindsker præcision af bestemmelsen af P17 ved optællingen,
hvorfor bestemmelserne blev udført med P17 alene.
Ved de udførte korttidstest var der en tydelig afgivelse af biotilgængeligt organisk
stof fra de undersøgte polymere materialer. Undersøgelser med blåt PEM materiale viste
en signifikant afgivelse selv efter kun 5 døgns ekstraktion ved 20°
C. Undersøgelserne viste, at der ikke var tale om en kort initial afgivelse, men en
afgivelsen over længere tid. I en undersøgelse med sort PEM materiale blev der
observeret en konstant afgivelse over 60 døgns ekstraktion. Der blev ikke fundet en
entydig sammenhæng imellem afgivelsen og S/V-forhold. Der blev set en tendens til
stigende AOCP17-koncentration i vandfasen med stigende S/V-forhold indtil et
vist S/V-forhold, hvor der ikke blev afgivet væsentligt mere til vandfasen. Omregnet til
flux var afgivelsen omvendt proportionalt med anvendte S/V-forhold.
Afgivelserne fra de fem undersøgte polymere materialer var af samme størrelsesorden:
3,5-5,5´ 10-3 mg
acetat-C/d/cm2, og vil kunne have betydning for den mikrobiologiske kvalitet af
drikkevand, såfremt opholdstiden i forsyningsrør og husinstallationer overskrider mere
end et par dage.
Additiver |
Stoffer der tilsættes et materiale for at forbedre
materialets egenskaber eller lette/muliggøre fremstillingsprocessen.
|
Aktive bakterier |
Levende bakterier, i modsætning til bakterier der er
inaktiveret (slået ihjel) ved desinfektion.
|
AOC |
Assimilerbart Organisk Carbon. Den fraktion af organisk
kulstof, der kan optages og udnyttes af bakterier.
|
ATP |
Adosin triphosphat, tjener som energilager i levende celler.
|
Autoklavering |
Desinfektionsmetode baseret på opvarmning i trykbeholder ved
120° C i 15 minutter.
|
Biofilm |
Et lag af organisk materiale med mikroorganismer som f. eks.
vokser på indersiden af vandrør.
|
CFU |
Colony Forming Unit, Engelsk udtryk for kimtal.
|
Desinfektion |
Proces der slår bakterier ihjel. De døde bakterier bliver
ikke fjernet.
|
E.O.M. |
Error Of Mean - den observerede spredning på kimtal
(anvendes for diskrete værdier).
|
Ekstraktion |
Proces hvor stoffer fra et materiale kan bliver afgivet til
vandfasen i kontakt med materialet.
|
Flux |
Massestrøm - afgivelse fra et materiale angivet i masse per
overfladeenhed per tidsenhed.
|
HPC |
Heterotrophic Plate Count (Heterotrofe kimtal).
|
Inkubering |
Dyrkning under definerede, kontrollerede forhold.
|
Kimtal |
Antal af mikroorganismer der danner kolonier ved dyrkning.
Antallet af fremkomne kolonier afhænger af dyrkningsforholdene (tid og temperatur) og det
anvendte medie.
|
Medie |
Næringsopløsning bakterier dyrkes på - er oftest gjort
fast ved tilsætning af agar.
|
NOX |
Aquaspirillum species, stamme NOX.
|
P17 |
Pseudonomas fluorescens, stamme P17.
|
Patogener |
Sygdomsfremkaldende mikroorganismer.
|
PE |
Polyethylen.
|
PEM |
PE - medium density. Findes endvidere som high density (PEH)
og low density (PEL).
|
PEX |
Krydsbundet PE.
|
PVC |
Polyvinylchlorid.
|
R2A-agar |
Agarmedie med en sammensætning der er specielt tilpasset de
næringsfattige forhold i drikkevand.
|
S/V-forhold |
Forhold imellem materialeoverflade (surface) og vandvolumen
(volume) i kontakt med materiale - udtrykt i cm2/cm3 = cm-1.
|
Teststykker |
Materiale udskåret i passende stykker, der bruges til
undersøgelse af materialet.
|
Testvand |
Vand der anvendes til ekstraktion ved undersøgelse af
materialer. |
Aminot, A.; Kerouel, R., 1998, Pasteurization as an alternative method for
preservation of nitrate and nitrite in seawater samples, Marine Chemistry,
vol.61:3-4:pp. 203-208
Atlas, R. M.; Bartha R., 1993, Microbial ecology - fundamentals and application,
3rd edition, The Benjamin/Cummings Publishing Company, Inc.
Bellen, E.G.; Abrishami, S.H.; Colucci, P.M.; Tremel; C.J., 1993, Methods for
assessing the biological growth support potential of water contact materials, AWWA
Research Foundation & American Water Works Association
Boe-Hansen, R., 1998a, Personlig kommentar
Boe-Hansen, R., 1998b, Upublicerede data
CEN, 1993, Note on preliminary results of interlaboratory trial, CEN TC164 WG3
AHG3
Corfitzen, C.B., 1999, Eftervækstpotentiale for polymere materialer anvendt i
vandforsyningen - Udvikling af metode, Eksamensprojekt ved Institut for
Miljøteknologi, Danmarks Tekniske Universitet
Coulson, H.S., 1972, Polymer types and additives, Plasticisers, stabilisers and
fillers (P.D. Ritchie, editor) London ILIFFE books Ldt.
DS/EN 852-1, 1997, Plastrørsystemer til transport af drikkevand - Vurdering af
migration - Del 1: Bestemmelse af plastrørs migrationsværdier, Dansk Standard
DFV vejledning, 1995 nr. 10, Planlægning af vandledningers fornyelse
DVF vejledning, 1998 nr. 17, Indledende rapport om vandkvalitet i ledningsnet
Escobar, I.C.; Randall, A.A., 2000, Sample storage impact on the assimiable organic
carbon (AOC) bioassay, Water Research vol. 34:5:pp. 1680-1686
Gill, C.O.; Badoni, M., 1997, The hygienic and organoleptic qualities of ground beef
prepared from manufacturing beef pasteurized by immersion in hot water, Meat Science,
vol. 46:1:pp. 67-75
Gill, C.O.; Jones, T.; Badoni, M., 1998, The effect of ho water pasteurizing
treatments on the microbiological conditions and appearances of pig and sheep carcasses,
Food Research International, vol. 31:4:pp. 273-278
Hem, L. J.; Norgaard, E.; Efraimsen, H., 1997, Begroing i drikkevannsledninger,
Norsk institutt for vannforskning (NIVA)
Henze, M.; Harremoës, P.; Jansen, J.l.C.; Arven, E., 1995, Wastewater treatment,
Springer-Verlag Berlin Heidelberg
Jørgensen, C.; Albrechtsen, H-J.; Arvin, E.; Corfitzen, C.B., 2002, Mikrobiel
karakteristik og eftervækst i drikkevand, Miljøstyrelsen - Programmet til sikring og
forbedring af drikkevandskvaliteten
Kotz, S.; Johnson, N.L.; Read, C.B., 1982, Encyclopedia of statistical sciences,
John Wiley & Sons, Inc, New York.
Københavns vand, 1998, Årsberetning 1998
Lorenzen, H., 1993, Ledningsanalyse i Odense, Vandteknik nr. 9:pp.456-464
Lyngby-Tårbæk Kommune, 2000 - Drikkevandsanalyse
Macia, L., 1974, The role of additives in plastics, Edward Arnold (Publishers)
Ldt.
Niemelä, S., 1983, Statistical evaluation of results from quantitative
microbiological examinations, Nordic committee on food analysis, Report no. 1, 2nd
edition
prEN, 1998, Methods for determining the potential of materials to influence the
microbiological quality of drinking water, Draft prENV, WRc
Reasoner, D.J.; Geldreich, E.E., 1985, A new medium for the enumeration and
subculture of bacteria from portable water, Applied and Environmental Microbiology
vol.49:1:pp. 1-7
Reichart, P., 1994, AQUASIM - a tool for simulation and data analysis of aquatic
systems, Water Science and Technology vol. 30:2:pp.
Schegel, H.G., 1986, General microbiology, sixth edition, Cambridge University
Press
Standard methods, 1998, Standard Methods for the examination of water and waste water.
20th edition. Assimilable organic carbon. APHA. Washington DC
van der Kooij, D., 1990, Assimilable organic carbon (AOC) in drinking water,
Drinking water microbiology pp. 57-87 (G.A. McFeters, editor), Brock/Springer series in
contemporary bioscience, Springer-Verlag, New York, Berlin
van der Kooij, D.; Veenendaal, H.R., 1995, Determination of the concentration of
easily assimilable organic carbon (AOC) in drinking water with growth measurements using
pure bacterial cultures. The AOC manual, The Netherlands Water Works Association
(VEWIN).
van der Kooij, D.; Visser, A.; Hijnen, W.A.M., 1982, Determining the concentration
of easily assimilable carbon in drinking water, Journal of American Water Works
Association, vol.74:10:pp. 540-545
Ward, A.; Stensel, H.R.; Ferguson, J.F.; Ma, G.; Hummel, S., 1999, Preventing growth
of pathogens in pasterurized digester solids, Water Environment Research,
vol.71:2:pp.176-182
ÖKI, 2000, Development of a method for the assessement of microbial growth on pipes
for drinking water supply, Österreichisches Kunststoffinstitut.
I det eksperimentelle arbejde blev der anvendt materialer tilsendt direkte fra danske
rør-producenter (med undtagelse af PEX-røret). I Tabel 0-1 er materialerne angivet med
de dimensioner, der blev anvendt i projektet - materialerne B - F er godkendt til brug i
drikkevandsforsyning herhjemme. I nogle tilfælde var det nødvendigt at skærer
rørstykkerne op på langs, for at de kunne gå i testflaskerne.
Tabel A-1:
Materialer anvendt i projektets eksperimentelle arbejde.
|
Materiale |
Diameter [mm] |
Rørmængde til
S/V-forhold på 0,5 cm-1 med 200 mL testvand |
Ydre |
Indre |
A |
Hvid PEX |
12 |
7 |
3 stk. á 5,3 cm |
B |
Blå PEM (1) |
32 |
29 |
1 stk. á 4,8 cm delt på langs i tre
dele |
C |
Blå PEM (2) |
20 |
16 |
2 stk. á 4,2 cm |
D |
Sort PEM |
20 |
16 |
2 stk. á 4,2 cm |
E |
Lysegrå PVC med bly stabilisatorer |
90 |
81,4 |
1 stk. á 1,3 cm delt på langs i 4 dele |
F |
Mørkegrå PVC (RAL 7011) med
calcium/zink stabilisatorer |
110 |
101 |
1 stk. á 2,4 cm delt på langs i 4 dele
- heraf anvendes 2 dele |
G |
Ufarvet PVC med organiske stabilisatorer
(prøvekørsel) |
110 |
99 |
1 stk. á 2,3 cm delt på langs i fire
dele - heraf anvendes 2 dele |
R2A er et lavsubstrat medie, hvilket gør det velegnet til bestemmelse af
kimtal fra oligotrofe miljøer /Reasoner et al., 1985/. RaA kan indkøbes som
et færdigt produkt, der blot skal opløses i destilleret vand efter anvisningen. Fra
Difco vil 1 L færdig agar til eksempel indeholde:
Bacto Yeast Extract |
0,5 |
g |
Bacto Protose Pepton No. 3 |
0,5 |
g |
Bacto Casamino Acids |
0,5 |
g |
Bacto Dextose |
0,5 |
g |
Soluble Starch |
0,5 |
g |
Sodium Pyruvate |
0,3 |
g |
Potassium Phosphat Dibasic |
0,3 |
g |
Magnesium Sulfate |
0,05 |
g |
Bacto Agar |
15 |
g |
Pladerne støbes i Ø=9 cm sterile petriskåle. Da P17 er følsom over for fugt, er det
vigtigt, at plader tørres inden de anvendes til AOC bestemmelse.
AOC-metoden er et bio-assay, hvor en vandprøves AOC-værdi bestemmes ud fra det antal
bakterier, der kan vokse op på de organiske kulstofforbindelser i prøven. Vandprøven
tappes i en kulstoffri testflaske, og prøvens naturlige bakteriepopulation inaktiveres
ved pasteurisering. Prøven podes efterfølgende med to bakteriestammer, Pseudonomas
fluorescens, stamme P17 og Aquaspirillum, stamme NOX, der
tilsammen kan omsætte langt størstedelen af de organiske kulstofforbindelser i
drikkevand /van der Kooij et al., 1995/. Prøven inkuberes i mørke ved 15° C, og bakterieantallet følges over tid ved at bestemme kimtallet
på R2A, et lavsubstrat medie specielt egnet til bestemmelser på
næringsfattige miljøer (sammensætningen af R2A er angivet i Bilag B).
Vækstkurvens maksimale bakterieantal omsættes til prøvens AOC-værdi udtrykt i acetat-C
ækvivalenter/L ved brug af udbyttekonstanter for P17 og NOX på acetat.
Udbyttekonstanterne for acetat-koncentrationer på 5-250 mg
acetat-C/L er 4,1*106 CFU/mg acetat-C for P17 og
1,2*107 CFU/mg acetat-C for NOX /van der Kooij et
al., 1995/.
Nedenfor er arbejdsgangen for AOC-metoden gennemgået i den udgave, der dannede
grundlag for projektet.
Alt arbejde med åbne prøver og podekulturer forgår i sterilbænk.
AOC-bestemmelser udføres i triplikat med 200 mL vandprøve i hvert enkelt testflaske
(250 mL 'red cap'-flaske [PYREX] med 'red cap'-låg med teflonindlæg [SCHOTT DURAN]).
Prøvens naturlige bakteriepopulation inaktiveres ved pasteurisering i 30 minutter ved 60° C. For at varme på prøven i så kort tid som muligt, opvarmes
prøven hurtigt i 90° C vandbad. Temperaturen følges i en
referenceflaske, der behandles som prøveflaskerne. Når temperaturen i referenceflasken
når 60° C, overføres prøven til 60°
C varmeskab, hvor den henstår i 30 minutter. Efter afkøling i isbad til testtemperaturen
podes prøven med P17 og NOX til en startkoncentration på 200-500 CFU/mL. Prøven
inkuberes ved 15° C indpakket i stanniol for at hindre
algevækst og photokemisk nedbrydning.
Under inkuberingen følges bakterieantallet ved overfladeudsæd på R2A,
hvor pipetteringer foretages med finnpipetter med engangsspidser af polypropylen. Inden
prøveudtagning fra en flaske føres denne i kraftige horisontale cirkelbevægelser for at
homogenisere prøven. Når fortynding af en prøve er nødvendig, fremstilles en ti-fold
fortyndingsrække ved at overføre 100 m L prøve til
eppendorf-rør med 900 m L autoklaveret postevand. Der
omblandes ved vortex-mixning, og herudfra fremstilles den videre fortyndingsrække på
samme vis, indtil de ønskede fortyndinger er opnået. Skal den ufortyndede prøve
udplades, udtages der i stedet 300 mL prøve til tomt
eppendorf-rør, hvorfra udpladning fortages og den videre fortyndingsrække fremstilles.
Fra tre fortyndinger udplades 50 m L i triplikater, ialt 9
plader. Kolonier optælles efter 2-3 dages inkubation ved 25°
C, idet forskel i kolonimorfologi gør det muligt at skelne imellem P17 og NOX. P17
fremtræder som beigefarvede kolonier på 2-3 mm i diameter, mens NOX vil ses som mindre
grå-hvide kolonier med en diameter på 1-2 mm. Plader med over 200 kolonier (af både P17
og NOX) optælles generelt ikke.
For hver enkelt bestemmelse beregnes kimtallet som et vægtet gennemsnit ud fra den
totale udstrøgne prøvemængde og det totale antal talte kolonier i prøvemængden. Den
observerede spredning (error of the mean, e.o.m) på kimtallet følger en Poisson
fordeling og vil følgelig være . Kimtallet bestemmes
således som:
Ci: antal kolonier fra enkel udstrygning i fortyndingsrækken
Wi: volumen udstrøget
De højst opnåede kimtal for P17 og NOX omregnes til AOC-værdier ved brug af
udbyttekonstanter på acetat. Prøvens total AOC-værdi bestemmes som:
AOCTotal = AOCP17 + AOCNOX
Flasker, låg og finnpipetter anvendes udelukkende til AOC-bestemmelse for at hindre,
at anden tidligere anvendelse medfører afgivelse af organisk stof eller stof, der virker
hæmmende på bakterievækst.
For at fjerne organisk kulstof rengøres testflasker og låg inden brug ved følgende
procedure:
 | Skylles med MilliQ-vand |
 | Henstand i 10% salpetersyre i minimum et døgn |
 | Skylles 6 gange med MilliQ-vand |
 | Mundinger dækkes med stanniol |
 | Glasflasker glødes ved 220° C i 5 timer - red
cap-låg ved 180° C i 6 timer |
Pipettespidser renses ikke specielt før brug, men tages direkte fra leveringsposer.
Spidser, der skal i direkte kontakt med prøve, pakkes iført vinyl-engangshandsker for at
begrænse overførsel af organisk materiale. Eppendorf-rør og pipettespidser autoklaveres
og tørres derefter ved 80° C.
Til desinficering af arbejdsområde og drigalskispatler anvendes der ikke sprit, da
dette vil kontaminere prøverne med organisk stof og resultere i forhøjet P17
koncentrationer. Arbejdsområde aftørres med en 0,05% CTMAK-opløsning
(cetyltrimethylammoniumchlorid), og drigalskispatler glødes i gasflamme og afkøles inden
brug.
Separate podekulturer af P17 og NOX fremstilles ved opdyrkning af bakterierne ved 15° C i næringssaltsmedie med 1 mg/L acetat /van der Kooij et al.,
1995/. Bakteriernes vækst følges ved overfladeudsæd på R2A, indtil et
maksimalt bakterieantal er opnået. Herefter opbevares kulturene i køleskab, hvor de har
en holdbarhed på omkring et halvt år.
Den ovenfor beskrevet arbejdsgang ved udførelse af AOC-metoden afviger på nogle
punkter fra /van der Kooij et al., 1995/. I Tabel 0-1 er de afgørende punkter listet. I
den oprindelige AOC-metode udføres bestemmelserne i 1 L Erlenmeyerkolber. Det er
imidlertid ofte mere hensigtsmæssigt at benytte "red cap"-flasker til
bestemmelserne. Transport og håndtering af prøver er lettere i "red
cap"-flasker end i Erlenmeyerkolber, da "red cap"-lågene er skruet fast og
dækker hele flaskemundingen. Ved brug af Erlenmeyerkolber risikeres det endvidere, at
propperne hopper op under transport og pasteurisering. Der er således umiddelbart langt
mindre risiko for at prøverne kontamineres fra omgivelserne ved at anvende "red
cap"-flasker. I projektets arbejde var det endvidere hensigtsmæssigt pga. mængden
af testmateriale og ønsket om fastholdt S/V-forhold at benytte mindre vandvolumener end
600 mL, hvorfor der blev valgt 250 mL flasker.
Tabel C-1:
Punkter hvor udførelsen af AOC-metoden gennemgået i afsnit 0 afviger fra
/van der Kooij et al., 1995/.
Parameter |
/van der Kooij et
al., 1995/ |
IMT |
Testflasker |
1000 mL Erlenmeyer kolbe med glasslib og
tilhørende glasprop |
250 mL red cap-flasker med
red cap-låg |
Vandvolumen |
600 mL |
200 mL |
Renseprocedure |
 | Maskinopvask
|
 | Skylles med dem. vand
|
 | Kolber og låg brændes sammen ved 550 °
C i 4 h
|
Alternativt:
 | Henstand i konc. Dichromat natten over
|
 | Skylles med varmt drikkevand
|
 | Henstand i 1 h i salpetersyre
|
 | Skylles i varmt drikkevand
|
 | Brændes ved 250 ° C i 8 h
|
|
 | Skylles med MilliQ-vand
|
 | Henstand i 10% salpetersyre i minimum et døgn.
|
 | Skylles 6 gange med MilliQ-vand
|
 | Mundinger dækkes med stanniol
|
 | Glasflasker brændes ved 220° C i 5 h -
red cap-låg ved 180 ° C i 6 h
|
|
Pipetter |
Glødede stangpipetter af glas |
Finnpipetter med engangsspidser af
polypropylen |
Fortyndings-
procedure |
9 mL postevand autoklaveret i
fortyndingsrør tilsættes 1 mL prøve |
0,900 mL autoklaveret postevand i
eppendorf-rør tilsættes 0,100 mL prøve |
Rensningen af testflaskerne er modificeret i forhold til van der Kooij et al.´s forskrift
/1995/, da de færreste laboratorier har kapacitet til at gløde et større antal flasker
ved 550° C. Den forskrevne metode anses for bedre end den
alternative metode foreslået af van der Kooij et al. /1995/, da syrevasken er forlænget,
og der anvendes MilliQ-vand (lavt indhold af organisk stof) til skylning.
Autoklavering af fortyndingsrør med fortyndningsvæske medfører ofte en ukontrolleret
fordampning af fortyndingsvæsken, hvilket vil give usikkerheder ved fortyndingen. Der
opnås derfor en større præcision ved at udmåle fortyndingsvæsken efter
autoklaveringen. Derved kan det samtidigt forsvares at anvende mindre volumener ved
fremstilling af fortyndingsrækker, så de kan fremstilles i eppendorf-rør og med
finnpipetter fremfor stangpipetter, da dette håndteringsmæssigt er mere praktisk
(automatpipetter med engangsspidser anvendes af Standard Methods /1998/).
En mulig risiko ved at anvende "red cap"-flasker med tilhørende låg fremfor
Erlenmeyerkolber kunne være, at der blev afgivet forbindelser fra lågenes teflon-indlæg
til vandfasen, som vil kunne påvirke bestemmelsen. For at kontrollere dette blev der
foretaget en sammenlignende undersøgelse med både Erlenmeyerkolber og "red
cap"-flasker. Teflon-indlæggene i "red cap"-lågene kan kun holde til at
undergå rensningsproceduren et begrænset antal gange, før de skal udskiftes. Det blev
derfor endvidere undersøgt, om der var en effekt af, om indlæg (monteret i lågene)
havde gennemgået rensningsproceduren én eller flere gange.
C.3.1. Forsøgsgang
Undersøgelsen blev udført med 250 mL Erlenmeyerkolber med tilhørende propper med
glasslib og 250 mL "red cap"-flasker med låg, hvor lågenes indlæg henholdsvis
havde undergået rensningsproceduren en enkelt gang ("nye" indlæg) eller mere
end én gang ("gamle" indlæg). Efter pasteurisering af testvandet (200 mL) i
flaskerne, blev flaskerne inkuberet ved 20° C under omrystning
(95 min-1).
Erlenmeyerkolberne blev inkuberet med et omvendt bægerglas over for at undgå
kontamineringer med støv (ifølge van der Kooij et al. /1995/). To sæt "red
cap"-flasker blev inkuberet med låget opad (ingen kontakt imellem indlæg og
vandfase) og to sæt med låget nedad (kontakt imellem indlæg og vandfase) - et med
"gamle" indlæg og et med "nye" indlæg. Undersøgelsen blev således
udført med 3 Erlenmeyerkolber, 2´ 3 "red
cap"-flasker med "nye" indlæg og 2´ 3
"red cap"-flasker med "gamle" indlæg.
Dag 7 blev alle "red-cap"-flasker og Erlenmeyerkolber podet med P17, og
derefter indkuberet (uden kontakt mellem vandfase og indlæg) ved 15°
C med kimtalsbestemmelse dag 0, 5, 7, 10, 14, 20, 25. Dag 25 blev alle flasker og kolber
tilsat 1 mL acetat-opløsning (der resulterede i omkring 25 mg
acetat-C/L i de enkelte prøver) for at undersøge om der var hæmmende faktorer i
vandfasen. Efterfølgende blev kimtallet bestemt dag 28 og 30, idet P17 med den anvendte
acetat-koncentration ville være udvokset inden for 5 døgn).
C.3.2. Resultater
Der var mindre end 20 CFU/mL P17 i vandfasen i to af flaskerne, hvor "nye"
indlæg var i kontakt med vandfasen, hvorfor disse blev podet med P17 på ny dag 25, forud
for kimtalsbestemmelse og tilsætning af acetat. Vækstkurver for P17 er afbilledet på
Figur 0-1, og maksimale AOCP17-koncentrationer er angivet i Tabel 0-1.
De meget høje værdier efter tilsætning af acetat til Erlenmeyerkolberne samt
værdien for "Erlenmeyer 3" dag 25 skal nok ikke tolkes som et reelle respons.
Propperne satte sig fast i slibene imellem de enkelte kimtalsbestemmelser, hvilket betød,
at der blev rørt meget ved området omkring kolbehalsen og proppen (især ved de tre
sidste gange). Desuden stod der vand i slibene; såfremt dette var blevet fjernet ved
opvarmning af kolbehalsen over en gasflamme ville det (pga. den lille flaskestørrelse)
have medført en for kraftig opvarmning af vandfasen.
I to af prøverne, hvor vandfasen var i kontakt med "nye" indlæg, forekom
der ingen vækst af P17, heller ikke efter repodning og tilsætning af acetat. I de
øvrige flasker var der en tilfredsstillende tilvækst af P17 efter tilsætning af acetat
(jævnfør Tabel C-2).
Tabel C-2:
AOCP17-værdier i vandprøver målt dels i "red
cap"-flasker og Erlenmeyerkolber. Vandprøverne blev efter pasteurisering inkuberet
ved 20° C under omrystning i 7 døgn. Efterfølgende blev AOC
bestemt ved 15° C. Til kontrol for hæmning i vandfasen fik
prøverne tilsat acetat dag 25 efter podning
|
"Red
cap"-flasker |
Erlenmeyer-
kolber |
Vandfase/Indlæg |
Kontakt |
Ingen
kontakt |
Ingen kontakt |
Antal rensninger af indlæg |
Én |
Mere end én |
Én |
Mere end én |
|
|
[mg acetat-C/L] |
[mg acetat-C/L] |
[mg
acetat-C/L] |
Max. AOCP17 |
0
0
8 |
7
10
5 |
6
3
4 |
5
5
6 |
8
7
20 |
Tilvækst i AOCP17 ved
til-sætning af 25 m g acetat-C/L |
0
1
27 |
25
33
29 |
29
25
28 |
29
25
31 |
32
83
80 |
Figur C-1:
Vækstkurver for P17 i vandprøver inkuberet i Erlenmeyerkolber med propper
med glasslib og i "red cap"-flasker med låg med henholdsvis "nye" og
"gamle" indlæg. "Red cap"-flaskerne blev inkuberet med og uden
kontakt imellem indlæg og vandfase. Flaskerne blev inkuberet ved 20°
C under omrystning i 7 døgn, hvorefter de blev podet med P17 og inkuberet ved 15° C. Dag 25 blev prøverne tilsat acetat.
Den udeblevne vækst i de to flasker kan enten tilskrives tilstedeværelsen af
toksiske/hæmmende stoffer i vandfasen eller, at vandfasen har været kontamineret med
bakterier, som ikke blev registreret på R2A pladerne. I et sådant tilfælde
har de pågældende bakterier haft 7 døgns forspring og således udkonkurreret P17. Ved
tilsætning af acetat har disse bakterier i stærkt overtal kunne omsætte acetaten, før
P17 kunne vokse op. Væksten i den tredje af flaskerne hvor "nye" indlæg var i
kontakt med vandfasen var i overensstemmelse med væksten i de øvrige flasker.
Sammenholdt med de senere udførte undersøgelser i Kapitel 8, er det mest sandsynligt at
den udeblivende vækst af P17 i de to flasker skyldes en kontaminering med uønskede
bakterier.
Ses der bort fra de to prøver uden vækst, var der på et 5% signifikantsniveau ikke
forskel i P17 koncentrationer som følge af de forskellige inkuberinger under
inkuberingsforløbet - hellere ikke hvis der opdeles imellem "nye" indlæg,
"gamle" indlæg og Erlenmeyerkolber eller kontakt , ingen kontakt og
Erlenmeyerkolber (heller ikke når der ses bort fra Erlenmeyerkolbe nr. 3 dag 25). Det kan
således ikke siges, at der er effekt af valg af flasketype eller antallet af rensninger
"red cap"-lågenes indlæg har undergået.
International ringest af AOC-bestemmelse
AOC-metoden som beskrevet i afsnit 0 blev anvendt af ÌMT ved en ringtest, der
omfattede fem europæiske laboratorier. Indenfor ringtesten blev der anlyseret 30
AOC-prøver med tre forskellige koncentrationer. Fire laboratorier opnåede
overensstemmende resultater - heriblandt KIWA og IMT /Jørgensen et al., 2000/. Den
anførte udførelse til bestemmelse af AOC kan således betragtes som velegnet.
I Kapitel 6 blev sort PEM materiale blev ekstraheret sekventielt over 60 (75) døgn.
Materialet blev ekstraheret i perioder á 15 døgn ved 10° C
med og uden omrystning ved S/V-forhold på 0,5 og 1,0 cm-1. Efter hver
ekstraktionsperiode blev teststykkerne overført til friskt testvand. De opnåede
ekstrakter blev podet med P17, og inkuberet ved 15° C.
For hver serie ekstrakter (ekstrakter fremstillet på samme teststykke) er de maksimale
kimtal akkumuleret over tid. I Figur 0-1 er de akkumulerede kurver afbildet, idet
kimtalsværdien er angivet ud for den dag, hvor ekstraktionen blev afsluttet. For P17 er
den akkumulerede AOC-værdi angivet ud for de enkelte kurver.
Figur D-1:
Akkumulerede kurver for sekventielle ekstraktioner. Materialet blev
ekstraheret i perioder af 15 døgn ved 10° C. Efterfølgende
vækst af P17 forgik ved 15° C. Akkumulerede AOCP17-værdier
er angivet for hver enkel serie ekstraktioner.
I kapitel 8 blev afgivelsen fra fem forskellige polymere materialer undersøgt.
Materialerne blev ekstraheret over 15 døgn ved 20° C under
omrystning ved et S/V-forhold på 0,5 cm-1. Efterfølgende blev ekstrakterne
podet med P17 og inkuberet ved 15° C. Undersøgelsen blev
udført i tre serier, hvor serie 1 og 2 efter væksten af P17 blev tilsat acetat, og
inkuberet endnu 5 døgn ved 15° C (jævnfør Kapitel 8 for
nærmere testforhold).
E.1. Vækst af P17
I Figur E-1 er vækstkurver for P17 afbilledet og i Tabel 0-1 er AOCP17-værdier
angivet sammen med tilvæksten i AOCP17 som følge af acetattilsætningen.
Tabel E-1:
Maksimale AOCP17-værdier i ekstrakter af polymert materiale
(Blindværdi ikke fratrukket). Ekstraktionerne blev udført ved 20°
C over 15 døgn under omrystning ved et S/V-forhold på 0,5 cm-1, mens væksten
af P17 foregik ved 15° C.
Materiale |
AOCP17 |
Tilvækst ved
tilsætning af acetat
» 20 m g acetat-C/L
» 25 |
|
[m
g acetat-C/L] |
[m
g acetat-C/L] |
|
Serie 1 |
Serie 2 |
Serie 3 |
Serie 1 |
Serie 2 |
Blå PEM 1
Blå PEM 2
Blå PEM 3 |
36
42
67 |
3
11
12 |
64
42
41 |
14
10
11 |
20
20
17 |
Sort PEM 1
Sort PEM 2
Sort PEM 3 |
22
7
65 |
46
43
92 |
63
56
54 |
22
20
0 |
1
0
4 |
PVC(Zn/Ca) 1
PVC(Zn/Ca) 2
PVC(Zn/Ca) 3 |
15
3
5 |
4
1
3 |
54
47
49 |
22
15
15 |
18
19
23 |
PVC(Pb) 1
PVC(Pb) 2
PVC(Pb) 3 |
7
1
0 |
39
39
15 |
11
46
52 |
19
18
0 |
7
15
22 |
PVC(Org.) 1
PVC(Org.) 2
PVC(Org.) 3 |
48
49
39 |
13
4
40 |
60
58
52 |
18
28
24 |
25
29
22 |
Blind 1
Blind 2
Blind 3 |
9
13
7 |
10
14
8 |
28
24
21 |
23
22
22 |
29
25
29 |
Figur E-1:
Vækstkurver for P17 i ekstrakter af 5 forskellige polymere materialer og
tilhørende blindprøver. Ekstraktionerne blev udført ved 20°
C over 15 døgn under omrystning ved et S/V-forhold på 0,5 cm-1, mens væksten
af P17 foregik ved 15° C. Alle materialer blev undersøgt i
tre serier.
E.2. ATP-data
Da der var problemer med kontaminering med uønskede bakterier under ekstraktionen, som
ikke blev registreret ved kimtalsbestemmelsene, blev der på dage med kimtalsbestemmelse
endvidere bestemt ATP. ATP-værdier større end 5 pg ATP/mL på dag 0 indikerer, at
ekstraktet har været kontamineret med uønskede bakterier under ekstraktionen. I
nedenstående tabeller er ATP-data for henholdsvis serie 1, 2 og 3 angivet.
Tabel E-2:
ATP data for ekstrakter fra serie 1 og 2 målt dag 0 efter podningen med P17.
Ekstraktionerne blev udført ved 20° C over 15 døgn under
omrystning ved et S/V-forhold på 0,5 cm-1, mens væksten af P17 foregik ved 15° C.
|
|
Dag 0
[pg ATP/mL] |
Replika |
|
Blå PEM |
Sort PEM |
PVC(Zn/Ca) |
PVC(Pb) |
PVC(Org.) |
Blind |
Serie 1 |
1
2
3 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
454
129
£ 5 |
936
336
321 |
85
817
74 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
Serie 2 |
1
2
3 |
14
352
223 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
85
24
137 |
£ 5
£ 5
17 |
26
98
£ 5 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
Tabel E-3:
ATP-data for ekstrakter fra serie 3 målt efter podningen med P17.
Ekstraktionerne blev udført ved 20° C over 15 døgn under
omrystning ved et S/V-forhold på 0,5 cm-1, mens væksten af P17 foregik ved 15° C.
|
|
[pg
ATP/mL]
Dag |
Replika |
|
0 |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
7 |
10 |
15 |
20 |
Blå PEM |
1
2
3 |
£ 5
18
17 |
£ 5
|
26
|
34 |
54 |
57 |
39 |
29 |
46 |
45 |
Sort PEM |
1
2
3 |
£ 5
13
33 |
£ 5
39 |
24
34 |
34
48 |
40
58 |
49
55 |
32
49 |
39
36 |
42
38 |
47
32 |
PVC(Zn(Ca) |
1
2
3 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
15
15
11 |
28
25
28 |
37
27
30 |
43
30
36 |
29
27
29 |
31
30
34 |
33
25
26 |
34
26
26 |
PVC(Pb) |
1
2
3 |
33
£ 5
£ 5 |
26
£ 5
£ 5 |
33
11
13 |
34
15
23 |
23
27
27 |
19
25
30 |
14
22
29 |
12
18
27 |
8
16
28 |
6
18
26 |
PVC(Org.) |
1
2
3 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
19
17
21 |
24
21
28 |
47
37
40 |
41
37
41 |
27
20
34 |
30
20
27 |
30
19
27 |
33
23
31 |
Blind |
1
2
3 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
£ 5
£ 5
£ 5 |
£ 5
9
£ 5 |
11
12
7 |
12
14
10 |
16
13
11 |
16
12
11 |
13
10
11 |
13
10
11 |
Alle levende celler indeholder adenosine triphosphate (ATP), som spiller en vigtig
rolle i cellernes enzymaktivitet og energilagring. ATP-niveauet i cellerne er nøje
reguleret, og kan derved anvendes som et mål for cellekoncentrationen i en given vandig
prøve. ATP-koncentrationen bestemmes udfra en enzymatisk reaktion katalyseret af
luciferase1:
Den resulterende lysudsendelse er direkte proportionel med ATP-koncentrationen.
Lysudsendelsen detekteres vha. en photomultiplier, der angiver lysmængden i 'relative
light units' (rlu).
Før en prøve måles, tilsættes denne et reagens, der frigiver intercelluar ATP til
vandfasen. Prøven tilsættes herefter en enzymopløsning indeholdende luciferin og
luciferase, og lysudsendelsen måles.
Da den enkelte prøves karakter (farve, tubiditet, pH osv.) kan påvirke enzymets
aktivitet (og dermed den optimale lysudsendelsen), måles der for hver prøve endvidere en
intern standard, hvormed målingen af prøven kan korrigeres.
Den korrigerede rlu-værdi omsættes vha. standardkurve til en ATP-koncentration, der
generelt opgives i pg ATP/ml.
I dette projekt blev måling af ATP foretaget med indstillingerne:
T = 25° C
10 s ekstraktionstid
10 s integrationstid efter 2 s delay
Prøver til ATP-måling udtages i ATP-fri eppendorf-rør, og opbevares indtil måling
ved -80° C.
Prøver fra serie 1 og 2 (Kapitel 8) blev målt på Biocounter Model 2010 fra Lumac,
med reagens-kit NRB/LUMIT-PM fra Celsis.
Prøver fra serie 3 (Kapitel 8) blev målt på Biocounter Model Advance Coupe fra
Celsis med reagens-kit PCP fra Celsis.
Prøver fra desinfektionsundersøgelsen i Bilag G blev målt på Biocounter Model
Advance Coupe fra Celsis med reagens-kit NRB/LUMIT-PM fra Celsis.
1 |
Fra Photinus pyralis (American firefly) |
Ved undersøgelsen af sekventielle ekstraktioner (Kapitel 6) var pasteuriseringen (60° C i 30 minutter), der blev benyttet forud for AOC-bestemmelsen,
ikke tilstrækkelig til inaktivere alle prøvernes bakterier. Problemet blev da løst ved
at øge pasteuriseringen til 60° C i 45 min. Ved
undersøgelsen af udvalgte materialer (Kapitel 8) var der imidlertid problemer med
bakterier, der heller ikke blev inaktiveret ved denne forøgede pasteurisering.
Det blev derfor undersøgt, om disse bakterier også kunne inaktiveres, blot de rette
pasteuriseringsforhold blev fundet.
G.1. Pasteuriseringsforhold
I litteraturen omhandler de fleste tilfælde med pasteurisering i reglen prøver af
fødevare eller gødning (eksempler er givet i Tabel G-1), hvilket ikke gav en endegyldig
løsning. Desuden kunne det tænkes, at en reduktion af biomassen i vandet ved en
sterilfiltrering inden pasteurisering kunne afhjælpe problemet med overlevelse af
bakterier.
Tabel G-1:
Eksempler på pasteuriseringstemperaturer anvendt i litteraturen.
Pasteuriseringsforhold |
Kilde |
70° C i 30
min
80° C i 10 min
85° C i 10 min
85° C i 15 min |
Ward et al., 1999; Standard Methods,
1998; Escobar et al., 2000
Schlegel, 1986
Gill et al., 1998
Gill et al., 1997 |
G.1.1. Undersøgelsen
Der blev udført en sammenlignende undersøgelse af følgende pasteuriseringsforhold:
 | 60° C i 45 minutter - postevand med teststykker opvarmes i
vandbad og overføres til ovn. |
 | 60° C i 45 minutter (sterilfiltreret postevand) - testvand
med teststykker opvarmes i vandbad og overføres til ovn. |
 | 70° C i 30 minutter - - postevand opvarmes i
vandbad, teststykker tilsættes og overføres til ovn. |
 | 80° C i 10 minutter - postevand opvarmes i vandbad,
teststykker tilsættes og overføres til ovn. |
 | 85° C i 15 minutter - postevand opvarmes i vandbad,
teststykker tilsættes og overføres til ovn. |
 | 85° C i 30 minutter - postevand opvarmes i vandbad,
teststykker tilsættes og overføres til ovn |
Teststykkerne blev tilsat vandet efter opvarmning til den ønskede temperatur, når
denne var 70° C og opefter. Dette blev valgt, da det tog
relativt lang tid at varme vandet op i vandbad, og det var ikke ønskeligt, at
teststykkerne skulle udsættes for de relativt høje temperature i længere tid end
fastsat ovenfor.
Undersøgelsen blev udført med teststykkerne af blå PEM og PVC(Zn/Ca) fra serie 2
(Kapitel 8). Siden optagningen havde teststykkerne blot været opbevaret i et bægerglas
uden nogen form for forholdsregler for at undgå kontamineringer eller lignende. For at
sikre at teststykker var kontamineret med de bakterier, som gav problemer, blev
teststykkerne inden pasteuriseringen inkuberet 3 døgn ved 20 °
C under omrystning i vandfaser fremstillet ud fra de kontaminerede ekstrakter fra serie 2:
Triplikate ekstrakter af henholdsvis blå PEM og PVC(Zn/Ca) blev anvendt. For hver
materialetype blev halvdelen af de triplikate ekstrakter overført til en 1 L flaske og
blandet i forholdet 1:1 med upasteuriseret postevand, for at sikre tilstrækkelig mængde
af næringssalte.
Teststykkerne blev enkeltvis overført (uden skylning) til testflasker med 200 mL
postevand (for to af flaskernes vedkommende sterilfiltreret postevand), og pasteuriseret
som angivet ovenfor. Efter afkøling blev der udtaget en prøve til måling af ATP, og
flaskerne blev inkuberet 7 døgn ved 20° C under omrystning
for at give eventuelle aktive bakterier mulighed for vækst. Herefter blev hver enkelt
prøve kontrolleret for vækst ved måling af ATP og udpladning af 0,5 mL på R2A
(enkelt plade per prøve). Pladerne blev inkuberet ved 25° C
og kontrolleret for vækst efter 9 og 15 døgn.
G.1.2. Resultater
Alle prøverne var kontamineret med bakterier, som gav anledning til kolonier på R2A,
dog var antallet af kolonier aftagende med stigende behandling (jævnfør Tabel G-2). For
prøver pasteuriseret ved 60-80° C voksede kolonierne op inden
for de første 9 døgns inkubering, mens langt de fleste kolonierne fra prøver
pasteuriseret ved 85° C voksede op inden for de sidste 5
døgns inkubering. Derudover var der forskel i kolonimorfologi, idet der var mindre
artsdiversitet med stigende varmebehandling.
Målingerne af ATP lige efter pasteuriseringen (dag 0) viste en klar tendens til
stigende ATP-.værdi med stigende behandling (Tabel G-3). Da det må antages, at der ved
overførelsen af teststykkerne inden pasteuriseringen er blevet overført et
sammenligneligt antal bakterier, må variationerne i ATP-værdi skyldes en reaktion på
opvarmningen.
Tabel G-2:
Kolonitantal opnået på R2A- plader fra undersøgelsen af
pasteuriseringsforhold efter 15 døgns inkubering ved 25° C.
Siden pasteuriseringen havde prøverne været inkuberet 7 døgn ved 20°
C med omrystning.
Pasteuriserings-
forhold |
PVC(Zn/Ca)
CFU/plade |
Koloni-
sammensæt-
ning |
Blå PEM
CFU/plade |
Koloni-
sammensæt-
ning |
60° C, 45 min
steril
60° C, 45 min
70° C, 30 min
80° C, 10 min
85° C, 15 min
85° C, 30 min |
>> 300
>> 300
5
12
25
22 |
3 dominerende
3 dominerende
1 dominerende
1 dominerende
1 dominerende
1 slags |
>> 300
>> 300
280
~ 300
~ 200
~ 80 |
3 dominerende
3 dominerende
1 dominerende
1 dominerende
1 dominerende
1 slags |
Tabel G-3:
ATP-værdier i prøver fra undersøgelsen af pasteuriseringsforhold før og
efter 7 døgns inkubering ved 20° C med omrystning.
Pasteuriserings-
forhold |
PVC(Zn/Ca]
[pg ATP/mL] |
Blå PEM
[pg ATP/mL] |
|
Dag 0 |
Dag 7 |
Dag 0 |
Dag 7 |
60° C, 45 min
steril
60° C, 45 min
70° C, 30 min
80° C, 10 min
85° C, 15 min
85° C, 30 min |
1
2
3
22
30
21 |
37
29
19
22
16
34 |
6
4
11
46
64
72 |
470
647
83
30
7
37 |
Både kimtalsbestemmelserne og ATP-værdierne efter 7 døgns inkubering viser, at det at
hæve pasteurisering fra 60° C, 45 minutter til 70° C, 30 minutter giver en betydelig reduktion af overlevende
bakterier. Yderligere hævning af pasteuriseringsforholdene giver ikke en videre reduktion
i en tilsvarende størrelsesorden.
Ingen af blindprøverne i Kapitel 8 var kontamineret, hvilket indikerer at overlevelsen
af uønskede bakterier er forbundet med materialet. Dette bekræftes af denne
undersøgelse, hvor fjernelse af testvandets bakterier inden pasteurisering (60° C, 45 minutter, steril) havde en relativt lille effekt på de
målte kontamineringer. En tilsvarende pasteuriseringsundersøgelse med kontamineret vand
alene viste, at 70° C, 30 minutter var tilstrækkeligt til at
inaktivere alle de uønskede bakterier, når der ikke var materiale til stede.
G.2. Kloring
Da ingen af de undersøgte pasteuriseringsforhold var tilstrækkelige til at inaktivere
de uønskede bakterier i forbindelse med materiale, blev kloring endnu engang undersøgt
som alternativ til pasteurisering. Der blev anvendt klorkoncentrationer på 25 mg Cl2/L
(som var en effektiv koncentration ved undersøgelserne i Kapitel 5) og 50 mg Cl2/L
(foreslået af Janne Forslund).
G.2.1. Undersøgelsen
De to vandfaser med bakterier, der blev anvendt til at inokulere teststykkerne i
pasteruriseringsundersøgelsen, blev anvendt igen. De to vandfaser blev samlet og
fortyndet med postevand i forholdet 1:1 for at sikre tilstrækkelige mængder af
næringssalte. Heri blev teststykker inkuberet 2 døgn ved 20°
C under omrystning for at sikre, at teststykkerne var kontamineret med de bakterier, som
gav problemer. Der blev anvendt teststykker af sort PEM, blå PEM og PVC(Zn/Ca) fra serie
1 (Kapitel 8). Siden optagningen havde teststykkerne blot været opbevaret i et bægerglas
uden nogen form for forholdsregler for at undgå kontamineringer eller lignende.
Teststykkerne blev efterfølgende overført til kloropløsninger på henholdsvis 25 og 50
mg Cl2/L, hvor de blev inkuberet et døgn ved stuetemperatur. Herefter blev
teststykkerne taget op, skyllet grundigt med pasteuriseret postevand (70° C, 30 minutter) og overført til testflasker med pasteuriseret
postevand. Der blev udtaget en prøve til måling af ATP, hvorefter flaskerne blev
inkuberet 7 døgn ved 20° C under omrystning for at give evt.
aktive bakterier mulighed for vækst. Der blev desuden inkuberet to flasker kun
indeholdende pasteuriseret testvand som kontrol. Efter inkubationen blev der udtaget en
ATP-prøve til kontrol for vækst.
G.2.2. Resultater
Tabel G-4:
ATP-værdier i prøver fra undersøgelsen af pasteuriseringsforhold før og
efter 7 døgns inkubering ved 20° C med omrystning.
Klorkoncentration
[mg Cl2/L] |
Materiale |
Dag 0
[pg ATP/mL] |
Dag 7
[pg ATPmL] |
25
|
Sort PEM
Blå PEM
PVC(Zn/Ca) |
< 5
< 5
< 5 |
23
333
8 |
50
|
Sort PEM
Blå PEM
PVC(Zn/Ca) |
< 5
< 5
< 5 |
< 5
< 5
< 5 |
- |
Kontrol A
Kontrol B |
< 5
< 5 |
< 5
< 5 |
ATP-værdier for undersøgelsen er angivet i Tabel G-4. De lave ATP-værdier for
kontrollerne bekræfter, at pasteurisering ved 70° C, 30
minutter var tilstrækkelig, når der ikke var materiale til stede. Ligeledes viser de
lave ATP-værdier i ekstrakter hvor materialet havde været udsat 50 mg Cl2/L,
at denne koncentration var tilstrækkelig til at inaktivere bakterierne på materialerne,
mens bakterierne har kunne overleve 25 mg Cl2/L.
Metodeovervejelser
De bakterier, som har givet problemer, kan inaktiveres i testvand/postevand ved en
pasteurisering ved 70° C, 30 minutter. Bakterierne kan
imidlertid klare langt højere temperaturer, når de er i kontakt med materiale. 50 mg Cl2/L
kunne ved et døgns henstand inaktivere bakterier i forbindelse med materiale, men dette
er en relativt høj klorkoncentration. Ved en sådan koncentration er risikoen for, at der
sidder klorrester tilbage på teststykkerne efter skylning relativ stor, og bestemmelsen
vil således blive behæftet med fejl. Så vidt det er muligt, er det derfor ønskeligt at
undgå kloring af teststykkerne med så høje klorkoncentrationer.
I de her beskrevne undersøgelser med pasteurisering og kloring blev der anvendt
materiale, som meget koncentreret havde været udsat for de uønskede bakterier.
Ovenstående undersøgelser viste at 70° C i 30 minutter var
en kraftig forbedring i forhold til 60° C i 45 minutter, mens
videre stigning i temperatur ikke havde den store effekt. Da det ikke var ønskeligt at
opvarme teststykkerne mere end højst nødvendigt, blev 70° C
i 30 minutter blev valgt ud fra den betragtning, at hvis der blev anvendt frisk nyt
materiale ville man stadig kunne undgå problemer med overlevelse af bakterier. En sådan
undersøgelse blev udført med sort PEM materiale, og ved måling af ATP blev der ikke
observeret vækst af uønskede bakterier. Dette indikerede, at den beskrevne behandling
var tilstrækkelig, men kunne også skyldes en ændring i vandsammensætningen fra
vandværket.
På de efterfølgende sider er angivet rådata fra bestemmelserne af kimtal samt de
tilhørende AOC-værdier. For hver enkelte prøve (flaske) er der for hver måledag
angivet kimtallet (CFU/mL), den observerede spredning (error of mean, E.O.M.) og antallet
af plader, der lå til grund for beregningen af kimtallet (N). Kimtallene (P17 og NOX) er
for hver enkelt dag omsat til den modsvarende AOC-værdi, hvilket er angivet i tabellernes
nederste del. Ved beregning af AOC-værdier blev udbyttekonstanter for P17 og NOX på
acetat fra /van der Kooij et al., 1995/ benyttet.
Der blev set bort fra data, hvis prøven var kontamineret med uønsket bakterier, eller
hvis vækstkurver i den pågældende prøve afveg stærkt fra de to øvrige triplikater
(jævnfør rapportens afsnit 3.3.3). Der blev bort fra data for både P17 og NOX, blot én
af de to stammer udviste en afvigende vækstkurve. Ligeledes blev der set bort fra
tællinger, hvor der totalt blev optalt mindre end 15 kolonier af den pågældende
bakterie. Data, der ikke indgår i beregningerne, er i nedenstående tabeller overstreget.
H.1 Ekstraktionsmetoder (jævnfør kapitel 4)
H.1.1 Ekstraktion uden aktive bakterier
PEX og blåt PEM(1) materiale blev ekstraheret ved et S/V-forhold på
0,5 cm-1 over 20 døgn ved 10° C uden omrystning.
Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne podet med P17 og NOX og inkuberet ved 15° C. Væksten af P17 og NOX blev fulgt ved bestemmelse af kimtal på
R2A dag 20, 25, 27,30, 35, 40 efter forsøgets start. R2A-pladerne
blev inkuberet ved 25° C i to-tre døgn. PEX og blåt PEM(1)
materiale blev undersøgt i to forsøg, hvorfor hvert materiale har egne blindværdier.
Der blev set bort fra ekstrakt #1, da dette var kontamineret med uønsket
bakterier.
Der blev set bort fra ekstrakt #3, da dette var kontamineret med uønsket bakterier.
H.1.2 Ekstraktion med P17 og NOX
PEX og blåt PEM(1) materiale blev ved S/V forhold på 0,5 cm-1
ekstraheret samme med P17 og NOX. Den samtidig ekstraktion og AOC-bestemmelse forløb over
20 døgn ved 10° C uden omrystning. Væksten af P17 og NOX
blev fulgt ved bestemmelse af kimtal på R2A dag 0, 5, 7, 10, 15, 20 efter
forsøgets start. R2A-pladerne blev inkuberet ved 25°
C i to-tre døgn. PEX og blåt PEM(1) materiale blev undersøgt i to forsøg,
hvorfor hvert materiale har egne blindværdier.
Der blev set bort fra ekstrakt #3, da dette var kontamineret med uønsket bakterier.
Der blev set bort fra enkelte tællinger af P17, da der totalt blev talt mindre end 15
kolonier.
H.1.3 Ekstraktion med en naturlig population
PEX og blåt PEM(1) materiale blev ved S/V forhold på 0,5 cm-1
ekstraheret samme med en naturlig bakteriepopulation. Ekstraktionen forløb over 20 døgn
ved 10° C uden omrystning. Væksten af den naturlige
population blev fulgt ved bestemmelse af kimtal på R2A dag 0, 5, 7, 10, 15, 20
efter forsøgets start. R2A-pladerne blev inkuberet ved 25°
C i 14 døgn. Efter materialet var taget op, blev ekstrakterne pasteuriseret, podet med
P17 og NOX og inkuberet ved 15° C. Væksten af P17 og NOX blev
fulgt ved bestemmelse af kimtal på R2A dag 20, 25, 27,30, 35, 40 efter
forsøgets start. R2A-pladerne blev inkuberet ved 25°
C i to-tre døgn. PEX og blåt PEM(1) materiale blev undersøgt i to forsøg,
hvorfor hvert materiale har egne blindværdier.
Der blev set bort fra ekstrakt #2 under AOC-bestemmelsen på grund af afvigende
høje NOX værdier.
Der blev set bort fra ekstrakt #1, da dette ved en fejl ikke blev podet med den
naturlige population dag 0.
H.2 Desinfektion af testmateriale (jævnfør kapitel 5)
Materiale blev inden ekstraktionen enten desinficeret ved henstand i chlor-opløsning,
ved pasteurisering eller ikke desinficeret. Efterfølgende blev materialet ekstraheret
sammen med en naturlig bakteriepopulation. Undersøgelsen blev udført med dels med blåt
PEM(1) materiale og en lav chlor-koncentration og dels med sort PEM materiale
og en høj chlor-koncentration.
H.2.1 Blåt PEM(1) materiale og lav chlor-koncentration
Undersøgelsen blev udført med blåt PEM(1) materiale og en
chlor-koncentration på 1 mg/L chlor. Materialet blev ekstraheret ved et S/V forhold på
1,0 cm-1 over 20 døgn ved 10° C uden omrystning.
Væksten af den naturlige population blev fulgt ved bestemmelse af kimtal på R2A
dag 0, 5, 7,10, 15, 20 efter podning. R2A-pladerne blev inkuberet ved 25° C i 14 døgn.
Pladerne for ekstrakt #2 dag 7 gik tabt.
H.2.2 Sort PEM materiale og høj chlor-koncentration
Undersøgelsen blev udført med sort PEM materiale og en chlor-koncentration på 22
mg/L chlor. Materialet blev ekstraheret ved et S/V forhold på 1,0 cm-1 over 55
døgn ved 10° C under omrystning. Væksten af den naturlige
population blev fulgt ved bestemmelse af kimtal på R2A dag 0, 5, 10, 20, 25,
30, 35, 40, 50, 55 efter podning. R2A-pladerne blev inkuberet ved 25° C i 14 døgn.
Pladerne for blindprøverne dag 50 gik tabt.
H.3 Sekventielle ekstraktioner (jævnfør kapitel 6)
Sort PEM materialer blev ekstraheret sekventielt ved at ekstrahere det enkelte sæt
teststykker af flere omgange. Efter 1. ekstraktion blev teststykkerne overført til frisk
testvand, hvor 2. ekstraktion forløb osv. Materialet blev ekstraheret i perioder á 15
døgn ved 10° C ved S/V forhold på 0,5 og 1,0 cm-1
både uden og under omrystning.
Efter materialet var taget op, blev de enkelte ekstrakter podet med P17 og inkuberet
ved 15° C. Væksten af P17 blev fulgt ved bestemmelse af
kimtal på R2A dag 0, 3, 5, 7, 10, 15, 20 (1. ekstraktion), 25 (2.-4.
ekstraktion) efter podning. R2A-pladerne blev inkuberet ved 25° C i to-tre døgn.
Der er set bort fra data for både P17 og NN, blot én af de to stammer udviste en
afvigende vækstkurve. I tilfælde hvor alle tre vækstkurver afveg fra hinanden, er det
valgt at bibeholde alle data.
H.3.1 1. ekstraktion
Der blev set bort fra ekstrakt #1, da vækstkurven for NN afveg fra de to øvrige
replikater.
Der blev set bort fra blindprøve #2, , da vækstkurven for NN afveg fra de to øvrige
replikater
H.3.2 2. ekstraktion
Der blev set bort fra ekstrakt #1, da vækstkurven for NN afveg fra de to øvrige
replikater.
Der blev set bort fra ekstrakt #1, da vækstkurven for P17 afveg fra de to øvrige
replikater
H.3.3 3. ekstraktion
Der blev set bort fra ekstrakt #2, da vækstkurven for NN afveg fra de to øvrige
replikater
Der blev set bort fra ekstrakt #1, da vækstkurverne for både P17 og NN afveg fra de
to øvrige replikater.
Der blev set bort fra blindprøve #1, da vækstkurverne for både P17 og NN afveg fra
de to øvrige replikater.
H.3.4 4. ekstraktion
Der blev set bort fra ekstrakt #1, da vækstkurverne for både P17 og NN afveg fra de
to øvrige replikater.
Der blev set bort fra blindprøve #2, da vækstkurverne for både P17 og NN afveg fra
de to øvrige replikater.
H.4 S/V forhold (jævnfør kapitel 7)
H.4.1 S/V forhold på 0,5 og 1,0 cm-1
Blåt PEM(1) materiale blev ekstraheret ved S/V forhold på 0,5 og 1,0 cm-1
ved 10° C uden omrystning over 9 og 20 døgn. Efter materialet
var taget op, blev ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15°
C. Væksten af P17 blev fulgt ved bestemmelse af kimtal på R2A dag 0, 5, 7,
10, 15, 20 efter podning. R2A-pladerne blev inkuberet ved 25°
C i to-tre døgn.
9 døgns ekstraktion
Der blev set bort fra blindprøve #3, da vækstkurven for P17 afveg fra de to øvrige
replikater.
20 døgns ekstraktion
Der blev set bort fra ekstrakt #1, da vækstkurven for P17 afveg fra de to øvrige
replikater.
H.4.2 S/V forhold i intervallet 0,06-1,38 cm-1
Blåt PEM(2) materiale blev ekstraheret ved 7 forskellige S/V forhold i
intervallet 0,06 til 1,38 cm-1 ved 20° C under
omrystning over 15 døgn. For S/V forholdene 0,14 og 0,69 cm-1 blev der
endvidere foretaget 5 døgns ekstraktioner. Efter materialet var taget op, blev
ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15° C. Væksten af
P17 blev fulgt ved bestemmelse af kimtal på R2A dag 0, 1, 2, 3, 4, 5, 7, 10,
15, 20 efter podning. R2A-pladerne blev inkuberet ved 25°
C i to-tre døgn.
5 døgns ekstraktion
15 døgns ekstraktion
Der blev set bort fra ekstrakt #3, da vækstkurven for P17 afveg fra de to
øvrige replikater.
Der blev set bort fra ekstrakt #3, da vækstkurven for P17 afveg fra de to øvrige
replikater.
Der blev set bort fra blindprøve #3, da vækstkurven for P17 afveg fra de to øvrige
replikater.
H.5 Undersøgelse af udvalgte materialer (jævnfør kapitel 8)
Fem forskellige polymere materialer blev ekstraheret ved et S/V forhold på 0,5 cm-1
ved 20° C under omrystning over 15 døgn. Efter materialet var
taget op, blev ekstrakterne podet med P17 og inkuberet ved 15°
C. Væksten af P17 blev fulgt ved bestemmelse af kimtal på R2A dag 0, 1, 2, 3,
4, 5, 7, 10, 15 efter podning. R2A-pladerne blev inkuberet ved 25° C i to-tre døgn.
H.5.1 Serie 1
Dag 29 efter podning blev ekstrakterne tilsat 20 m g
acetat-C/L, hvorefter inkuberingen ved 15° C fortsatte med
yderlige bestemmelse af kimtal dag 29, 32, 34 efter podning.
Der blev set bort fra ekstrakt #3, da vækstkurven afveg fra de to øvrige
replikater.
Der blev set bort fra ekstrakterne #1 og #2, da disse var kontamineret med uønskede
bakterier (bestemt ved ATP-måling).
Der blev set bort fra alle tre ekstrakter, da de var kontamineret med uønskede
bakterier (bestemt ved måling af ATP).
Der blev set bort fra alle tre ekstrakter, da de var kontamineret med uønskede
bakterier (bestemt ved måling af ATP).
H.5.2 Serie 2
Dag 20 efter podning blev ekstrakterne tilsat 25 m g
acetat-C/L, hvorefter inkuberingen ved 15° C fortsatte med
yderlige bestemmelse af kimtal dag 20, 23, 25 efter podning.
Der blev set bort fra alle tre ekstrakter, da de var kontamineret med uønskede
bakterier (bestemt ved måling af ATP).
Der blev set bort fra ekstrakt #3, da vækstkurven for P17 afveg fra de to øvrige
replikater.
Der blev set bor fra alle tre ekstrakter, da de var kontamineret med uønskede
bakterier (bestemt ved måling af ATP).
Der blevset bort fra ekstrakt #3, da dette var kontamineret med uønskede bakterier
(bestemt ved måling af ATP).
Der blev set bort fra ekstrakt #1 og #2, da de var kontamineret med uønskede
bakterier (bestemt ved måling af ATP).
H.5.3 Serie 3
Der blev set bort fra ekstrakterne #2 og #3, da de var kontamineret med uønskede
bakterier (bestem ved måling med ATP).
Der blev set bort fra ekstrakterne #2 og #3, da de var kontamineret med uønskede
bakterier (bestem ved måling med ATP).
Der blev set bort fra ekstrakt #1, da dette var kontamineret med uønskede bakterier
(bestem ved måling med ATP).
|
|